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지식 FAQ

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  • 국내 및 해외의 제브라피쉬 소재은행은 야생형 제브라피쉬 뿐만 아니라 개별연구자들에 의하여 개발된 돌연변이 및 형질전환 제브라피쉬 라인들을 기탁받아 필요한 연구자들에게 분양해 줌으로서 연구자들이 필요한 제브라피쉬 라인을 손쉽게 연구에 활용할 수 있도록 지원을 하고 있으며, 국내와 국외에서 제브라피쉬를 분양 받을 수 있는 소재은행의 사이트는 아래와 같습니다. 

     

      - 미국 : Zebrafish International Resource Center (ZIRC, https://zebrafish.org)

      - 유럽 : European Zebrafish Resource Center (EZRC, https://www.ezrc.kit.edu)

      - 일본 : National BioResource Project(NBRP, https://shigen.nig.ac.jp/zebra/index_en.html)

      - 국내 : 질환모델링 제브라피쉬 소재은행(KNRRC, https://cc.aris.re.kr/zcdm/app/org/orgIntro.do), 형광리포터 제브라피쉬 협력센터(FRZCC) 

     

    특히 해외의 제브라피쉬 소재은행에서 형광리포터 제브라피쉬의 수입은 “형광리포터 제브라피쉬 협력센터"에 요청하시면 수입 및 검역과정에 대하여 지원을 받을 수 있습니다.

     

    • 해외에서 형광리포터 제브라피쉬를 수입 할 수 있나요?
    • 형질전환 제브라피쉬를 분양받을 수 있는 곳이 있나요?
    • 유전자 녹아웃 제브라피쉬를 어디에서 분양받을 수 있나요?
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  • 제브라피쉬는 척추동물모델로서 인간이 가지는 대부분의 유전자를 가지고 있으며 동시에 인간 유전체와 높은 유전학적, 기능적 유사성을 가지고 있는 동물모델 입니다. 특히 제브라피쉬는 유전자의 돌연변이 동물모델 제조 및 형질전환 동물모델 제조가 용이하여 이들 유전자변형 제브라피쉬를 이용하여 뇌신경질환(파킨슨, 루게릭병, 정신분열/자폐증), 심장 및 혈액질환, 종양질환(위암, 간암, 췌장암), 대사성 질환(비만, 지방간, 당뇨), 피부질환(미백제, 아토피), 염증 및 면역질환 등의 다양한 질환동물모델 제조가 가능하며 이러한 질환모델을 이용한 질병의 병인 기전 연구 및 신약개발연구가 활발히 이루어지고 있습니다. 또한 환경유해물질이나 화학물질에 의한 독성 연구에도 활발하게 이용되고 있는 동물모델 입니다. 

     

    국내에서 제브라피쉬는 한국생명공학연구원, 질병관리청 국립보건연구원, 안전성 평가연구소, 국립해양생물자원관, 한국한의학연구원, 한국화학연구원 등 다수의 연구소에서 질환연구, 신약개발연구, 독성연구 등에 활용되고 있으며, 또한 많은 대학에서 제브라피쉬를 이용한 다양한 연구가 수행되고 있습니다. 한국제브라피쉬연구회(http://kzfs.co.kr)를 방문하시면 제브라피쉬 동물모델을 활용하는 국내 연구진과 연구분야를 확인하실 수 있고, 또한 다양한 제브라피쉬 관련 연구정보를 확인하실 수 있습니다. 

     

    해외에서 제브라피쉬를 이용한 다양한 연구정보는 The Zebrafish Information Network (https://zfin.org)에서 확인할 수 있으며, 제브라피쉬를 이용한 사람의 질환연구에 대한 정보는 Zebrafish Disease Model Society 홈페이지(https://www.zdmsociety.org)에서 확인할 수 있습니다.

    • 제브라피쉬로 어떤 연구를 할 수 있나요?
    • 제브라피쉬로 사람의 질병을 연구 할 수 있나요?
    • 제브라피쉬로 유해물질의 독성연구가 가능한가요?
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  • 형질전환 제브라피쉬는 야생형의 제브라피쉬 배아에 인위적으로 연구자가 발현시키기를 원하는 외부의 유전자를 주입하여 발현되도록 만들어진 유전자 조작 제브라피쉬를 의미합니다. 제브라피쉬 배아에 주입된 외부 유전자는 야생형의 제브라피쉬가 가지고 있던 유전체(Genome)에 삽입되어 본래의 유전체와 함께 자손에 유전됨으로써 지속적으로 외부 유전자를 발현하게 됩니다.  따라서 형질전환 제브라피쉬는 본래의 야생형이 가지고 있지 않은 외부 유전자가 발현되어 단백질을 추가로 만들어 내기 때문에 야생형과는 다른 발달 및 행동 차이를 보일 수 있습니다. 

     

    하지만 도입된 외부 유전자가 발달이나 행동과는 관련이 없는 단백질을 만드는 경우에는 행동이나 발달과정의 차이가 관찰되지 않을 수도 있습니다. 특히 GFP나 RFP등의 형광단백질을 생산하는 유전자를 삽입한 경우에는 발달이나 행동의 변화없이 형광현미경을 이용한 형광단백질의 관찰을 통하여 특정 조직이나 세포의 발생 및 분화, 그리고 이동 과정을 관찰할 수 있는 형광리포터 제브라피쉬를 제조할 수 있습니다.

     

    형질전환 제브라피쉬를 제조할 때에 외부 유전자를 발현시키기 위하여 사용한 프로모터의 종류에 따라서 외부 유전자가 발현되는 조직과 발현시기가 달라질 수 있으며, 따라서 외부유전자를 발현시키기 위하여 사용한 프로모터의 종류에 따라서 형질전환 제브라피쉬의 표현형이 달라지게 됩니다. 

     

    형질전환 제브라피쉬를 제조하는 방법에는 외부 유전자를 발현하기 위해 필요한 프로모터를 확보하는 방법에 따라서 ① Tol2 transposon-based system 이용, ② E-coli based homologous recombination 방법, ③ knock-in 방법 등을 사용할 수 있습니다

    • 형질전환 제브라피쉬는 무엇인가요?
    • 형질전환 제브라피쉬와 야생형 간에 발달 및 행동 차이를 줄일 수 있나요?
    • 형질전환 제브라피쉬는 야생형과 어떤 차이가 있나요?
    • 1. Zhu ZY, Sun YH. Embryonic and genetic manipulation in fish. Cell Res. 2000;10(1):17-27. 
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  • 형질전환 제브라피쉬는 필요한 조직특이적으로 형광단백질을 발현하는 재조합 DNA를 만들어서 제브라피쉬 배아에 microinjection하여 제작합니다.

     

    1. 먼저 형광단백질을 발현시키고자 하는 조직에서 특이적으로 발현하는 프로모터를 확보합니다.

    2. 조직특이적 프로모터와 형광유전자 또는 발현시키고 싶은 유전자를 포함하는 재조합 DNA를 제조합니다.  

    3. 형광유전자 발현을 위한 재조합 DNA의 제조에는 ① Tol2 transposon-based system 이용, ② E-coli based homologous recombination 방법, ③ knock-in 방법 등을 사용할 수 있습니다.

    4. Microinjector를 이용하여, One-cell stage의 제브라피쉬 배아에 만들어진 재조합 DNA를 미세주입 합니다. 

    5. 미세주입된 DNA는 배아의 발생과정을 거치며 개체의 유전체에 삽입됩니다. 

    6. 재조합 DNA가 주입된 배아들을 성체까지 키운 후, 이들을 야생형(wildtype) 제브라피쉬와 교배하여 F1 세대의 배아를 확보합니다.

    7. F1 세대에서 미세주입된 외부 재조합 DNA에 의한 형광발현을 확인함으로써 형광리포터 제브라피쉬를 확보합니다. 

     

     

     

    그림 1. 형광리포터 제브라피쉬 제조과정 (출처: MATER METHODS. 2012;2:109.)

     

    표 1. 형광리포터 제브라피쉬 제조방법에 따른 장단점 비교

     

    • 형질전환 제브라피쉬는 어떻게 만드나요?
    • 제브라피쉬의 형질전환 여부는 어떻게 판별하나요?
    • 형광을 발현하는 형광리포터 제브라피쉬는 어떻게 만드나요?
    • 1. Kawakami K. Tol2: a versatile gene transfer vector in vertebrates. Genome Biol. 2007;8 Suppl 1(Suppl 1):S7.
    • 2. Chen X, Gays D, Santoro MM. Transgenic Zebrafish. Methods Mol Biol. 2016;1464:107-114. 
    • 3. Kardash E. Zebrafish Research Methods. MATER METHODS. 2012;2:109.
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  • 제브라피쉬는 자연에서의 발생속도와 유사한 사육 조건을 제공해야합니다. 

     

    1) 9 cm 직경 페트리디쉬에 10 ml의 Egg H2O를 넣고 약 100개의 발생배를 넣으면 좋다.

     

        - Egg H2O: 멸균증류수 945 ml에 다음 시약을 넣어준다

       (10ml 10mM NaH2PO4,  0.01M; 10ml 10mM Na2HPO4, 20ml 100mM Sodium Citrate, 15ml 100mM CaCl2
     

    2) 대조구가 죽은 것은 물고기가 알을 낳을 때 변과 같은 분비물을 같이 배출하기 때문에 부모의 장 환경에 따라 난막에 여러 병원성 미생물이 붙어 있을 수 있다. 특히, 질산성세균이 난의 발생을 악영향을 미치므로 breeding cage에서 최대한 빠른 시간 내 알을 회수하고 0.005%의 메틸렌블루가 있는 Egg H2O에 약 1-2시간 정도는 배양 후, 메틸렌블루가 없는 Egg H2O로 교환 후 배양한다.
     

     

    • 제브라피쉬 배아를 페트리디쉬에서 Micro-Well Plate로 옮겨서 실험하는 중간에 대조구가 죽어요
    • 1. Lawrence C, Harper C. The Laboratory Zebrafish. CRC Press; 2016.
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  • 실험에 희생한 제브라피쉬 유생과 성체 물고기가 최소한의 고통으로 떠날 수 있게 해야합니다. 

     

    1. 유생

     

      - 7일 이하(7dpf): 락스(15%)원액을 사육수와 1:4로 섞은 후, 이 용액에 유생을 넣고 5분간 기다린 후 희생 확인

      - 8-15일: 약 4℃ 정도 찬물이 있는 페트리디쉬에 물고기를 넣고 얼음 위에 페트리디쉬를 올려 놓은 후  수분 정도 기다린 후 희생 확인

     

     2. 15일 이상~성체

     

       - 얼음마취(약 5-10분간 얼음에 담가둠) 후 이석이 있는 부분을 수술용 가위로 잘라줍니다. 

       - 0.4 % 이상 농도의 tricaine사용

     


     

     

    • 실험이 종료 되었는데 제브라피쉬 유생과 성체는 어떻게 해야 하나요?
    • 1. Lindsey BW, Douek AM, Loosli F, Kaslin J. A Whole Brain Staining, Embedding, and Clearing Pipeline for Adult Zebrafish to Visualize Cell Proliferation and Morphology in 3-Dimensions. Front Neurosci. 2018;11:750. 
       
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  • 제브라피쉬는 순환여과양식시스템(RAS: Recirculating Aquaculture System), 즉, 폐쇄 시스템에서 사육하기 때문에 물고기의 분비물 및 먹다남은 사료, 사료에서 용출되는 영양성분들이 시스템 물에 남아 순환하면서 병원성 미생물의 영양분으로 작용을 합니다. 가장 흔하게 발생하는 질병은 솔방울병과 아가미병입니다. 이러한 질병을 일으키는 원인균들이 존재하지만 수질관리에 의해 발병하는 것이 대부분입니다. 폐쇄 양육시설에서 순환하는 사육수가 모든 물고기에게 노출되기 때문에 사료 급이 후 남은 사료 제거 및 분비물 제거를 부지런히 해야합니다.

     

    1. 세균성 질병: 세균성 질병은 만성적이고 실내사육 물고기에 자주 나타납니다. 치사율은 낮지만 특정 상황에서는 치명적일 수 있습니다.

     

      1) 피부 및 전신감염

        (1) 원인체: Aeromonads, Salmonicida, Pseudomonas spp., Edwardsiella spp., Streptococcus spp., Nocardia spp.

        (2) 증상: 피부에 육안으로 보이게 감염, 궤양성·괴사성 피부 및 지느러미 병변, 체표홍반, 출혈, 복막염, 전신부종

        (3) 치료 방법: 정확한 감염의 종류를 확인하여 적절한 항생제를 사용, 수질환경 개선

     

      2) 마이코박테리오시스

        (1) 원인체: Mycobacterium spp.

        (2) 증상: 다산감소, 무기력, 거식증, 수축, 피부궤양, 고열, 부종, 복부팽창

        (3) 치료 방법: 항생제가 잘 듣지 않기 때문에 감염된 물고기 제거, 수질 최적화, 엄격한 위생 및 검역, 감염된 시스템 및 부속품 소독

     

      3) 아기미질환 (BGD, Bacterial Gill Disease): 여러 세균 뿐만 아니라 고밀도사육 및 수질악화로도 발생

        (1)원인체: Aeromonads, Salmonicida, Pseudomonas spp., Edwardsiella spp., Streptococcus spp., Nocardia spp. Mycobacterium spp.등 여러 세균들

        (2) 증상: 호흡곤란(유영빈도 증가 혹은 물표면으로 유영빈도 증가, 심할 경우 궤양형성 및 근육내 출혈 관찰

        (3) 치료 방법: 6-15 ppm 클로라민 T로 약 1시간 약욕
     

     

    2. 원생동물성 질병 

     

      1) 벨벳병 (Velvet Disease): 대표적인 외형변화가 체표비늘이 솔방울 모양처럼 뻗어 솔방울병이라고도 부름

        (1) 원인체: Piscinoodinium pollulare   

        (2) 증상: 체표 비늘이 솔방울처럼 뻗음, 아가미 염증, 저산소증, 삼투압 조절 장애, 2차 세균 감염, 먹이 감소

        (3) 치료 방법: 물 10L에 인공소금 1g을 넣은 소금물에 하루정도 약욕. Atabrine TM을 1회 1 mg/l로 3일간 투약, Chloroquine Hydro-Chloride로 침지

    • 제브라피쉬는 질병이나 상처가 났을 때 자연적인 회복이 되나요?
    • 1. Astrofsky KM, Harper CM, Rogers AB, Fox JG. Diagnostic techniques for clinical investigation of laboratory zebrafish. Lab Anim (NY). 2002;31(3):41-45.
    • 2. Bowker J, Erdahl D. Observations on the efficacy of chloramine-T treatment to control mortality in a variety of salmonids. The Progressive Fish-Culturist. 1998;60(1):13-66.
    • 3. Waltman WD, Shotts EB, Blazer VS. Recovery of Edwardsiella ictaluri from danio (Danio devario). Aquaculture. 1985;46:63-66.
    • 4. Waltman WD, Shotts EB, Hsu TC. Biochemical characteristics of Edwardsiella ictaluri. Appl Environ Microbiol. 1986;51(1):101-104.
    • 5. Weber R, Schwartz DA, Deplazes P. Laboratory diagnosis of microsporidiosis. In: Wittner M, Weiss LM. The Microsporidia and Microsporidiosis. Wiley; 1999:315-362. 
    • 6. Whipps CM, Kent ML. Polymerase chain reaction detection of Pseudoloma neurophilia, a common microsporidian of zebrafish (Danio rerio) reared in research laboratories. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2006;45(1):36-39.
    • 7. Williams H. Parasitic worms of fish. CRC Press;1994:593.
    • 8. Zrzavy J, Hypša V. Myxozoa, Polypodium, and the origin of the Bilateria: The phylogenetic position of ‘‘Endocnidozoa’’ in light ofthe rediscovery of Buddenbrockia. Cladistics. 2003;19:164-169.
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  • 제브라피쉬를 건강하게 사육하기 위해서 청소 및 소독 절차는 매우 중요하며 사용하는 시설의 유형과 수조당 제브라피쉬의 수, 수조의 형태와 시스템 및 수질 등의 여러가지 조건에 따라 선택해야 합니다. 

     

    1) 일반적인 청소 : 질병 전염의 가능성이 우려되지 않는 상황에서는 비누 및 화학적 소독제의 사용이 독소를 유발할 수 있으므로 될 수 있으면 피하는게 좋습니다. 청소 중 유량을 증가시키면 감염물질을 제거할 수 있고, zebrafish를 수집하는데 사용되는 그물과 같은 경우 화학적 소독제를 사용하여 멸균하여 감염의 가능성을 제거하는 것이 필요합니다. 

     

    2) 화학적 소독제 및 세제 종류 : BCMB(Benzalkonium Chloride + Methylene Blue Solution), SH(Sodium Hypochloride (6.15% Bleach)), PPSC(Potassium Peroxymonosulfate + Sodium Chloride (37g/1gallon RO water)) 등

     

    3) 소독제 사용방법 : 소독제에 수조를 각각 BCMB-30분, SH-5분이상, PPSC-30분 정도 담근 후 물로 철저히 헹궈내야 합니다. 

     

    4) 주의사항 : 소독제 및 세제를 사용하여 폴리카보네이트 탱크를 청소하는 경우, 수중 환경의 비누 잔류물이 제브라피쉬의 몸에 쉽게 흡수되어 질병과 사망을 유발할 수 있으므로 물로 철저히 헹궈야 합니다. 탱크를 다시 채우기 전에 탈염소 또는 역삼투를 거친 깨끗하고 차가운 물로 여러 번 철저히 헹궈야 합니다. 작업 표면은 사용 전후에 청소해야 하며 물고기가 청소된 표면과 접촉하거나 청소 제품의 냄새가 나는 곳에서도 동일한 주의가 적용됩니다. 

     

     

    • 제브라피쉬 사육을 위한 수조 청소 방법 및 주의사항을 알고 싶습니다
    • 제브라피쉬 사육 시 사용할 수 있는 청소용 소독제 및 세제가 있을까요?
    • 1. Collymore C, Porelli G, Lieggi C, Lipman NS. Evaluation of 5 cleaning and disinfection methods for nets used to collect zebrafish (Danio rerio). J Am Assoc Lab Anim Sci. 2014;53(6):657-660.
    • 2. Collymore C, Watral V, White JR, et al. Tolerance and efficacy of emamectin benzoate and ivermectin for the treatment of Pseudocapillaria tomentosa in laboratory zebrafish (Danio rerio). Zebrafish. 2014;11(5):490-497.
    • 3. Collymore C, Crim MJ, Lieggi C. Recommendations for Health Monitoring and Reporting for Zebrafish Research Facilities. Zebrafish. 2016;13 Suppl 1(Suppl 1):S138-S148.
    • 4. Avdesh A, Chen M, Martin-Iverson MT, et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. J Vis Exp. 2012;(69):e4196.
       
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  • 제브라피쉬는 수정 후 3개월에서 18개월 사이에 최적의 번식조건을 갖추게 되며, 근친교배와 유전적 결함을 최소화하고 유전적 다양성을 증가시키려면 육종을 관리해야 합니다.

     

    1)  암수 짝짓기 시기 : 제브라피쉬의 배란은 주변 물에 있는 남성 생식선 페로몬의 존재를 통해 유도되는 것으로 알려져 있으며, 일주주기 중 빛이 들어오면 그로부터 1~2시간 동안인 아침에만 물고기가 짝짓기를 하여 산란을 하게 되고 암주기가 되면 휴식을 취합니다. 

     

    2) 짝짓기 방법 : 제브라피쉬 암컷은 거의 매일 산란이 가능하나 좋은 양의 알이나 양질의 알을 얻어 건강하고 번식력이 있는 번식 개체군을 유지하기 위해서는 암컷을 1~2주에 한 번 번식을 추천합니다. 번식 설정에는 암수 비율을 1:1보다 수컷보다 암컷이 더 많이 있는 것이 좋습니다. 제브라피쉬는 맨 바닥에 직접 난자와 정자를 방출하는 산란자이며, 자갈이나 대리석과 풀 형태으로 강화된 환경을 제공하는 플라스틱 수조 등의 인공 산란 장소나 사육 수조를 기울여 깊이 기울기를 생성함으로써 제브라피쉬의 자연 환경을 제공하는 것을 추천합니다.

     

    3) 알 낳기: 암컷은 일반적으로 단일 산란에서 70-300개의 투명한 알을 생산하며 그 중 80% 이상이 수정됩니다. 건강한 난자와 배아는 반투명한 황색을 띄며, 알의 지름은 약 1.0-1.5mm 입니다. 양질의 배아를 얻는 것은 연구 목표를 달성하고 사용되는 어류의 수를 최소화 하는데 중요합니다. 제브라피쉬 배아와 관련된 대부분의 연구(예: 발달-정신 생물학, 해부학 및 유전학 연구)의 경우 높은 비율(>80%)의 난자가 성공적으로 수정되고 배아가 깨끗하고 균일한 첫 번째 과정을 거치는 것이 특히 중요합니다.

     

     

     

    그림: (A) 수정된 알과 미수정된 알들(검정화살표)의 현미경사진 (8X). 수정된 알(B)와 미수정알(C)의 고배율 이미지. (사진출처: 김민정) 

     

    • 제브라피쉬 성어가 한번에 낳을 수 있는 알의 개수는 몇 개일까요?
    • 제브라피쉬는 언제 짝짓기를 하고 보통 몇 개의 알을 낳나요?
    • 1. Esmail MY, Astrofsky KM, Serluca FC. The Biology and Management of the Zebrafish. In: Fox J. 3rd ed. Laboratory Animal Medicine. Academic Press; 2015:1015-1062. 
    • 2. van den Hurk R, Resink JW. Male reproductive system as sex pheromone producer in teleost fish. Journal of Experimental Zoology.1992;261:204-213. 
    • 3. Vargesson NA. Zebrafish. In: Barnett S, ed. Manual of Animal Technology. Wiley-Blackwell; 2007.
    • 4. Nasiadka A, Clark MD. Zebrafish breeding in the laboratory environment. ILAR J. 2012;53(2):161-168.
    • 5. Kurtzman MS, Craig MP, Grizzle BK, Hove JR. Sexually segregated housing results in improved early larval survival in zebrafish. Lab Anim (NY). 2010;39(6):183-189.
    • 6. Matthews M, Trevarrow B, Matthews J. A virtual tour of the Guide for zebrafish users. Lab Anim (NY). 2002;31(3):34-40.
    • 7. Hutter S, Penn DJ, Magee S, Zala SM. Reproductive behaviour of wild zebrafish (Danio rerio) in large tanks. Behaviour. 2010;147(5):641-660.
    • 8. Avdesh A, Chen M, Martin-Iverson MT, et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. J Vis Exp. 2012;(69):e4196.
    •  
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  • 제브라피쉬 암수는 대개 육안으로 구별됩니다. 제브라피쉬는 암수 교배를 통해 매주 100~200개 정도의 알을 생산할 수 있기 때문에 알을 낳을 수 있는 암컷은 수컷보다 배 주위가 부풀어 있어 구별할 수 있습니다. (그림 1.) 

    또한 암컷은 알을 생산해야 하기 때문에 수컷보다 식성이 좋은 편이고 좀 더 공격적인 특징이 있습니다. 제브라피쉬 암수는 서로 몸색이 조금 다르게 보이므로 색깔에 의해서도 구별이 가능합니다.수컷은 다소 분홍색 혹은 노란색을 띄는 반면 암컷은 분홍색이 덜 합니다. 그러나 야생형(wild type)일지라도 AB, TU, WIL, EK 등 strain에 따라 조금씩 다를 수 있어서 주의가 필요합니다. 일반적으로 동물에서 암컷이 더 오래 생존하는 것으로 알려져 있는데, 제브리피쉬 암수의 수명차이에 대한 보고는 되어 있지 않습니다. 

     


    그림 1. 제브라피쉬 암수 (출처: https://encrypted-tbn0.gstatic.com/images?q=tbn:ANd9GcS4_eQ4hgxNFDjZm3n-wUJmxMiPuxmDOSpxxw&usqp=CAU)

    • 제브라피쉬 암수 구별은 어떻게 하나요?
    • 제브라피쉬 암수 수명에 차이가 있나요?
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