이전 재생 정지 다음

닫기

지식 FAQ

  • 동물별
  • 분야별
  • 보통 선충은 한 세대에 알을 200-300개 낳기 때문에 이들이 자라면 배지에 있는 박테리아 먹이가 고갈됩니다. 배지에 있는 박테리아 양에 따라 다르겠지만 보통 고체 배지의 경우 한 세대 정도만 유지할 수 있습니다.  따라서 한 세대가 자라는 시간인 4-5일마다 몇 마리의 선충을 새 배지에 옮겨 strain을 유지합니다.

    • 선충을 키우는 배지 사용기간은 어느 정도가 좋은가요?
    • 1. Stiernagle T. Maintenance of C. elegans. WormBook. 2006;1-11.
    Print
  • 세포배양 실험의 경우, 흔히 약물이나 펩타이드 또는 호르몬을 첨가하여 변화를 보기도 하고, 쥐의 경우는 먹이거나 주사로 주입함으로써 이들 물질의 기능을 알아보기도 합니다. 예쁜꼬마선충의 경우, 고체배지나 액체배양액에 각종 약물을 첨가할 수 있고 이 방법으로 다양한 약물 스크린이 성공적으로 이루어진 사례가 많이 있습니다. 다만 예쁜꼬마선충은 몸이 큐티클 층으로 둘러싸여 있기 때문에 약물이 잘 침투하지 못하는 경우가 있습니다. 따라서 보통은 이 점을 감안하여 보통 세포배양 시 사용하는 농도보다는 더 높게 처리해야 효과가 나타납니다. 호르몬이나 펩티드의 경우 분자의 크기가 더 크기 때문에 이 경우는 거의 침투가 안된다고 보면 됩니다. 다만 큐티클 형성 변이종을 이용하여 낮은 효율이긴 하지만 성공적으로 펩티드를 침투시킨 사례가 있고, 펩티드 유전자를 갖고 있는 박테리아를 먹이로 줌으로써 그 박테리아를 먹은 선충의 몸 내부에서 펩티드를 만들어내게 한 사례 또한 있습니다. 
     

    • 예쁜꼬마선충에 약물을 처리할 경우 어떤 점을 고려해야 하나요?
    • 1. O'Reilly LP, Luke CJ, Perlmutter DH, Silverman GA, Pak SC. C. elegans in high-throughput drug discovery. Adv Drug Deliv Rev. 2014;69-70:247-253.
    • 2. Schinkmann K, Li C. Localization of FMRFamide-like peptides in Caenorhabditis elegans. J Comp Neurol. 1992;316(2):251-260.
    • 3. Reilly DK, McGlame EJ, Vandewyer E, et al. Distinct neuropeptide-receptor modules regulate a sex-specific behavioral response to a pheromone. Commun Biol. 2021;4(1):1018.
       
    Print
  • 인간 남성의 성염색체 구성이 XY로 된 것과는 달리, 예쁜꼬마선충은 Y 염색체가 따로 없고 X 성염색체가 하나만 있을 때 (XO) 수컷(male)으로 발달합니다. 수컷이 나오는 방법은 수컷과의 교미를 통해 나오는 경우가 있고, 우연히 감수분열 과정에서 염색체 분리가 제대로 안됐을 때 가끔 나오기도 합니다 (0.2% 확률). 수컷이 필요할 때는 염색체 분리 이상의 빈도를 높일 수 있는 고온 처리(L4 유충을 30˚C에서 3-4시간 배양)를 통해서 일부러 수컷을 얻기도 합니다. 그러나 교배를 해야하거나 특별히 수컷을 따로 연구하는 것이 아니라면 배지에 수컷이 혼재하지 않는 것이 좋습니다. 수컷과 교미를 한 자웅동체(hermaphrodite)는 수명이 짧아진다는 등의 보고가 있기 때문에, 실험 결과에 의도치 않은 영향을 줄 수 있습니다. 배지에서 수컷을 없애는 가장 쉬운 방법은 아직 교미 가능한 전단계인 L3 이하의 자웅동체를 선별해서 키우는 것입니다.

     


     

    • 배지에 수컷이 생기는 이유는 무엇인가요?
    • 1. Hodgkin J. Two types of sex determination in a nematode. Nature. 1983;304(5923):267-268.
    • 2. Meneely PM, Dahlberg CL, Rose JK. Working with worms: Caenorhabditis elegans as a model organism. Current Protocols Essential Laboratory Techniques. 2019;19:e35.
    • 3. Shi C, Murphy CT. Mating induces shrinking and death in Caenorhabditis mothers. Science. 2014;343(6170):536-540. 
       
    Print
  • [모델생물로서의 예쁜꼬마선충]

     

    예쁜꼬마선충(Caenorhabditis elegans)이 본격적으로 모델생물로 사용된 것은 시드니 브레너(Sydney Brenner)가 이를 유전학 연구에 이용하면서부터입니다. DNA의 이중 나선 구조가 밝혀진 후인 1950-60년대에는 DNA의 유전 정보가 어떻게 단백질로 해석되는지에 관한 연구가 활발히 진행되었는데, 시드니 브레너도 이에  큰 기여를 한 과학자였습니다. 

     

    이후 그는 앞으로는 유전자가 단백질로 해석되는 것에서 더 나아가, 궁극적으로 동물의 형질에 어떻게 작용하는지를 연구해야한다는 생각을 갖고, 적절한 모델생물로 선충을 떠올리게 됩니다. 예쁜꼬마선충은 19세기 말부터 이미 여러 과학자들에 의해 형태나 생식 방법, 생애주기, 염색체의 수 등이 자세히 밝혀져 있었고 배양법도 정립이 된 상태였습니다. 이런 이유로 시드니 브레너는 예쁜꼬마선충의 변이종 연구를 통해 다양한 유전자의 기능을 밝힐 수 있을 것이라 판단을 했습니다 

     

    [자연에서의 예쁜꼬마선충]

     

    지금도 물론 자연에서 예쁜꼬마선충을 채집할 수 있습니다. 주로 온난한 기후에서 먹이가 되는 미생물이 많이 서식하는 썩은 과실이나 식물 등에서 발견이 되는데, 아쉽게도 한국에서는 관련종들은 많이 발견이 되었어도 예쁜꼬마선충은 발견된 사례가 없습니다. 유전체가 동일하게 유지되는 실험실 strain(N2)과는 달리, 자연종 예쁜꼬마선충은 유전체에 다양성을 갖고 있고, 발견되는 위치에 따라 이런 다양성이 더 두드러지기도 합니다. 
     

     

    • 자연에서 살고 있는 예쁜꼬마선충과 실험실에서 사는 예쁜꼬마선충은 다른가요?
    • 예쁜꼬마선충은 어떻게 발견이 되었나요?
    • 1. Brenner S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 1974;77(1):71-94.
    • 2. CRICK FH, BARNETT L, BRENNER S, WATTS-TOBIN RJ. General nature of the genetic code for proteins. Nature. 1961;192:1227-1232.
    • 3. Goldstein B. Sydney Brenner on the Genetics of Caenorhabditis elegans. Genetics. 2016;204(1):1-2.
    • 4. Nigon VM, Félix MA. History of research on C. elegans and other free-living nematodes as model organisms. WormBook. 2017;2017:1-84. Published 2017 Sep 7.
    • 5. Barrière A, Félix MA. Isolation of C. elegans and related nematodes. WormBook. 2014;1-19. Published 2014 May 2. 
    •  
    Print
  • 다양한 방법으로 같은 나이의 예쁜꼬마선충을 준비할 수 있습니다. 여기서는 크게 3가지 방법을 소개합니다. L1단계에서 나이를 맞추는 방법 2가지와 같은 시점에 낳은 알들로 준비하는 방법 1가지 입니다.
     

    1) L1단계에서 나이를 맞추는 방법

     - 준비물: Bleach 용액 (0.5~1M NaOH, 1.6~3% NaClO (가정용표백제가 약 8% 지만 제품별로 확인)

     

     (1) 많은 선충을 얻는 방법 (2000 마리 이상)

       - NGM 배지 위에 있는 어른 선충들을 M9 용액을 이용하여 15ml 튜브나 50ml 튜브로 옮겨 닮는다. 

       - 원심분리기에서 1300g로 1분 돌려 선충들을 바닥에 가라 앉히고, 튜브 안의 용액을 Bleach 용액 5ml로 바꿔준다.

       - 1분마다 튜브를 휘저으며 선충들이 녹아 알이 빠져나오는 정도를 확인한다. 약 5분 정도면 대부분의 알이 몸에서 빠져 나온다.

       - 원심분리기에서 1300g로 1분 돌려 알들을 바닥에 가라 앉히고, 튜브 안의 용액을 M9 용액 10ml로 바꿔준다. 이 과정을 3번 반복한다.

       - 이 튜브를 쉐이커나 로터에 올려 알들을 지속적으로 섞이도록 하며 대부분의 알이 부화할 때까지 기다린다. 

       - 배양 온도에 따라 부화에 걸리는 시간이 달라지는데, 예를 들어 20°C에서는 20~24시간 정도 기다리게 된다. 

       - 나이가 같은 L1들을 동시에 OP50가 있는 NGM으로 옮겨 키우면 된다. 

     

     (2) 소수의 선충으로 충분할 때 (50 마리 정도)

       - OP50가 없는 NGM 배지에 Bleach 용액 2~10μl를 떨어뜨린다. 

       - 10마리 이상의 알을 밴 어른 선충들을 집어 Bleach 용액 속으로 넣어준다. 용액이 빨리 마르므로 서두른다.

       - 필요에 따라 배지의 다른 위치에 똑같은 과정을 반복하여 총 20마리 이상의 어른 선충들을 용해시킬 수도 있다.

       - 배양 온도에 따라 충분히 기다리면 알에서 부화한 L1들을 발견할 수 있고, 이들을 동시에 OP50가 있는 NGM으로 옮겨 키운다. 
     

     

    2) 같은 시점에서 낳은 알로 나이를 맞추는 방법 (소수의 선충으로 충분할 때, 50마리 정도) 

     - OP50가 있는 NGM 배지에 20~30마리의 알을 밴 어른 선충들을 옮겨 놓고 30분간 알을 낳도록 한다.

     - 충분한 수의 알을 낳은 것을 확인하고 모든 어른 선충들을 제거한다. 원하는 배양 조건에서 계속 배양한다. 

     - 손이 많이 가지만 Bleach 용액을 쓰지 않고도 같은 나이의 선충들을 준비할 수 있다.

     

    • 예쁜꼬마선충의 Synchronization은 어떻게 하나요?
    • 예쁜꼬마선충의 Egg Prep은 어떻게 하나요?
    • 1. Brockett MR, Spica PS, Shinn-Thomas JH. C. elegans synchronization: Small- and large-scale protocols to isolate synchronized L1 larvae and beyond. The Worm Breeder's Gazette. 2016. http://wbg.wormbook.org/2016/05/16/c-elegans-synchronization-small-and-large-scale-protocols-to-isolate-synchronized-l1-larvae-and-beyond/
    • 2. Johnson TE, Mitchell DH, Kline S, Kemal R, Foy J. Arresting development arrests aging in the nematode Caenorhabditis elegans. Mech Ageing Dev. 1984;28(1):23-40.
    • 3. Stiernagle T. Maintenance of C. elegans. WormBook. 2006;1-11. 
    • 4. Porta-de-la-Riva M, Fontrodona L, Villanueva A, Cerón J. Basic Caenorhabditis elegans methods: synchronization and observation. J Vis Exp. 2012;(64):e4019.
       
    Print
  • 예쁜꼬마선충 연구자들은 연구 도중 개발한 strain들을 아래와 같은 데이터베이스에 등록하여 유실되지 않고 지속적으로 관리되도록 합니다. 그러므로, 데이터베이스 등록 건수를 확인하면 얼마나 많은 종류의 strain이 개발되었는지 확인할 수 있습니다. 단, 미등록된 strain도 있기 때문에 이보다 더 많은 수가 개발되었을 것입니다. 

     

    1) Wormbase (https://wormbase.org): 총 51,562 종 (WS285기준, 2022년 3월 27일)

    - strain 목록 다운로드: https://downloads.wormbase.org/releases/current-production-release/MULTI_SPECIES/ 내 strain_RRIDs.WS286.dat.gz 폴더

     

    2) CGC (https://cgc.umn.edu): 총 23,759 종 (2022년 10월 11일자, 첫 등록은 1975년 10월 1일의 DR97)

    - strain 목록 다운로드: https://cgc.umn.edu/static/cgc-strains.txt 

     

    3) NBRP Japan (https://shigen.nig.ac.jp/c.elegans/): 총 13,149 종 (2022년 3월 5일자)

    • 예쁜꼬마선충의 strain은 몇 종류들이 개발되었나요?
    • 널리 사용되는 예쁜꼬마선충 데이터베이스에 총 몇 종의 strain이 등록되어 있나요?
    • 1. Harris TW, Arnaboldi V, Cain S, et al. WormBase: a modern Model Organism Information Resource. Nucleic Acids Res. 2020;48(D1):D762-D767.
    • 2. Caenorhabditis genetics center. Nature. 1980;284(5756):513.
    • 3. Yamazaki Y, Akashi R, Banno Y, et al. NBRP databases: databases of biological resources in Japan. Nucleic Acids Res. 2010;38(Database issue):D26-D32.
    Print
  • 다음과 같은 방법으로 예쁜꼬마선충의 gDNA를 추출하고 (원하는 부분을) 증폭하여 염기서열 분석을 할 수 있습니다.   

     

    1) 준비물: 10X PCR Buffer (100mM Tris, 500mM KCl, 20mM MgCl2, pH 8.3), 1X PCR Buffer, Proteinase K (20mg/ml), PCR 튜브 

     

    2) 순서

      (1) 1X PCR Buffer 95μl + Proteinase K 5μl 을 섞습니다.

      (2) PCR 튜브에 (1)을 5μl 넣습니다. (선충 여러마리로부터 추출할 경우, 10μl 를 넣습니다.)

      (3) 선충 한 마리 (또는 여러마리)를 (2)의 튜브에 넣고, 이 튜브를 원심분리기로 15초 정도 돌려 내용물이 밑으로 가라앉게 합니다.

      (4) 이 튜브를 액체질소로 최소 10분간 (혹은 -80°C 냉동고에 20분간) 냉각합니다. 이 단계에서 -80°C 냉동고에 보관해도 됩니다.

      (5) 선충의 용해 및 gDNA 추출: 이 튜브를 60~65°C로 60~90분간 가열합니다. 

      (6) 95°C로 15분간 가열하여 Proteinase K를 불활성화하고, 이 단계에서 -80°C 냉동고에 보관해도 됩니다.

      (7) 이 튜브에 있는 용액 중 5μl를 template으로 하여 PCR을 하면 됩니다. 

    • 예쁜꼬마선충의 genomic DNA는 어떻게 추출하나요?
    • 예쁜꼬마선충의 돌연변이는 어떻게 확인하나요?
    • 1. Williams BD, Schrank B, Huynh C, Shownkeen R, Waterston RH. A genetic mapping system in Caenorhabditis elegans based on polymorphic sequence-tagged sites. Genetics. 1992;131(3):609-624.
    • 2. Fay D, Bender A. SNPs: introduction and two-point mapping. WormBook. 2008;1-10.
    • 3. Biron D, Haspel G. C. elegans Methods and Applications (Methods in Molecular Biology, 1327). 2nd ed. Human Press; 2015:1-10.
       
    •  
    •  
    Print
  • 예쁜꼬마선충을 이용한 연구로 수여된 노벨상은 현재(2022년)까지 총 3번 입니다. 추가적으로 초세대 후성 유전 현상을 포함한 다양한 연구가 예쁜꼬마선충을 통해 진행되고 있습니다.

     

    2002년 노벨 생리학의학상은 3명의 예쁜꼬마선충 연구자인 시드니 브레너(Sydney Brenner, 1927~2019), 로버트 호비츠(H. Robert Horvitz, 1947~), 존 설스턴(John E. Sulston, 1942~2018) 박사에게 수여되었습니다. 이들은 예쁜꼬마선충을 생물학 모델동물로 제안하고 동물 발달에서의 유전적 조절과 프로그램된 세포사멸 현상 발견에 기여한 공로를 인정받았습니다. 해당 현상에 참여하는 유전자를 발견하고 세포사멸과의 상호작용 방식을 확인하였으며, 이후 이러한 현상이 인간에게도 존재한다는 것을 알게 되었습니다.

     

    2006년 노벨 생리학의학상 역시 2명의 예쁜꼬마선충 연구자에게 수여되었습니다. 앤드류 파이어(Andrew Z. Fire, 1959~)와 크레이그 멜로(Craig C. Mello, 1960~) 박사는 RNA 간섭(RNA Interference) 현상의 발견에 기여한 공로를 인정받아 노벨상을 수상하였습니다. RNA 간섭이란 이중 가닥의 RNA로부터 생성된 단일 가닥 RNA가 RISC복합체에 결합한 뒤, 해당 RNA 서열에 상보적인 mRNA를 절단, 분해하는 과정입니다. 자연계에서는 viral RNA 및 transposon(Genome 내에서 이동하는 서열)으로부터 전사된 RNA를 분해하는 것이 관찰되었습니다. 또한 mRNA를 분해하거나 단백질로의 번역을 억제할 수 있기 때문에, 유전자 발현을 조절할 수 있습니다. 이는 생물 의학 연구, 유전자 기술 및 건강 관리의 새로운 기회라 할 수 있습니다.

     

    2008년 노벨 화학상은 GFP(Green Fluorescent Protein; 녹색 형광 단백질)의 발견 및 생물학 연구에 활용하는 방법을 개발한 공로로, 시모무라(下村 脩, 1928~2018), 첸(Roger Yonchien Tsien, 1952 ~2016), 챌피(Martin Chalfie, 1947~) 박사에게 수여되었습니다. 이중 예쁜꼬마선충 연구자인 마틴 챌피 박사는 예쁜꼬마선충을 활용해 생체의 신경세포를 GFP로 표지해서 살아있는 동물에서 관찰하는 방법을 개발한 공로를 인정받았습니다. 이후, DNA 재조합 기술을 사용하여 다양한 단백질에 GFP를 연결하여 특정 단백질의 세포내 움직임, 위치 및 상호 작용을 관찰할 수 있게 되었습니다.

     

    이처럼 모델동물인 예쁜꼬마선충을 이용한 연구는 여러 차례 노벨상을 수상할 만큼 생명과학 연구에 커다란 기여를 하였고, 현재에도 신경과학, 후성유전학, 세포생물학, 독성학 등 다양한 분야의 연구에 많은 기여를 하고 있습니다. 한 예로, TEI(Transgenerational Epigenetic Inheritance; 세대 간 후성 유전)를 통한 정보 전달은 불가능하다고 오랫동안 생각되어 왔으나 예쁜꼬마선충 실험을 통해 녹농균(Pseudomonas aeruginosa, P11)에 대한 회피 기억이 초세대적으로 전달될 수 있다는 새로운 사실을 발견했습니다. 예쁜꼬마선충을 비롯한 다양한 모델 동물을 활용한 기초과학 연구를 통해 새로운 개념, 지식, 기술 등이 발견되고, 이는 관련 질병이나 손상의 진단, 치료 및 예방 등에 임상적으로 적용될 수 있는 중요한 기반이 됩니다.

     

    • 우리가 일반적으로 알고 있는 생물학적 지식 중 예쁜꼬마선충을 통해 알아낸 것은 무엇이 있나요?
    • 예쁜꼬마선충이 기여하여 수여된 노벨상에는 어떤 것이 있나요?
    • 1. The Nobel Prize in Physiology or Medicine 2002. nobelprize.org. Updated July 27, 2022. Accessed July 28, 2022. https://www.nobelprize.org/prizes/medicine/2002/press-release/
    • 2. Sulston JE, Brenner S. The DNA of Caenorhabditis elegans. Genetics. 1974;77(1):95-104. 
    • 3. Sulston JE, Horvitz HR. Abnormal cell lineages in mutants of the nematode Caenorhabditis elegans. Dev Biol. 1981;82(1):41-55. 
    • 4. Sulston JE, Schierenberg E, White JG, Thomson JN. The embryonic cell lineage of the nematode Caenorhabditis elegans. Dev Biol. 1983;100(1):64-119.
    • 5. Ellis HM, Horvitz HR. Genetic control of programmed cell death in the nematode C. elegans. Cell. 1986;44(6):817-829.
    • 6. Yuan JY, Horvitz HR. The Caenorhabditis elegans genes ced-3 and ced-4 act cell autonomously to cause programmed cell death. Dev Biol. 1990;138(1):33-41.
    • 7. Yuan J, Shaham S, Ledoux S, Ellis HM, Horvitz HR. The C. elegans cell death gene ced-3 encodes a protein similar to mammalian interleukin-1 beta-converting enzyme. Cell. 1993;75(4):641-652.
    • 8. The Nobel Prize in Physiology or Medicine 2006. nobelprize.org. Updated July 27, 2022. Accessed July 28, 2022. https://www.nobelprize.org/prizes/medicine/2006/press-release/
    • 9. Fire A, Xu S, Montgomery MK, Kostas SA, Driver SE, Mello CC. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 1998;391(6669):806-811. 
    • 10. Bagasra O, Prilliman KR. RNA interference: the molecular immune system. J Mol Histol. 2004;35(6):545-553.
    • 11. Lodish HF, Zhou B, Liu G, Chen CZ. Micromanagement of the immune system by microRNAs [published correction appears in Nat Rev Immunol. 2008 Mar;8(3):238]. Nat Rev Immunol. 2008;8(2):120-130.
    • 12. Ahlquist P. RNA-dependent RNA polymerases, viruses, and RNA silencing. Science. 2002;296(5571):1270-1273. 
    • 13.  Voorhoeve PM, Agami R. Knockdown stands up. Trends Biotechnol. 2003;21(1):2-4.
    • 14. The Nobel Prize in Chemistry 2008. nobelprize.org. Updated July 27, 2022. Accessed July 28, 2022. https://www.nobelprize.org/prizes/chemistry/2008/press-release/
    • 15. Chalfie M, Tu Y, Euskirchen G, Ward WW, Prasher DC. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science. 1994;263(5148):802-805.
    • 16. Moore RS, Kaletsky R, Lesnik C, et al. The role of the Cer1 transposon in horizontal transfer of transgenerational memory. Cell. 2021;184(18):4697-4712.e18.
    Print
  • 예쁜꼬마선충의 모든 strain과 allele에는 고유의 명칭이 있습니다. 선충의 strain 및 allele은 연구실 코드(Lab Code) 영문자 뒤에 숫자를 함께 붙여 명명합니다. 연구실 코드는 1개에서 최대 3개의 영문자로 이루어지며, 대개 연구 책임자의 이니셜 또는 해당 연구 기관, 도시의 이름을 축약한 글자입니다. 이때, 연구자의 임의대로 명명하게 되면 혼동이 생길 수 있으므로 연구실 코드는 Caenorhabditis Genetics Center (CGC)에 신청하여 승인 받는 절차를 반드시 거쳐야 합니다. 연구실 코드는 CGC에서 조회해 볼 수 있습니다.
     

    예를 들면, 예쁜꼬마선충을 모델동물로 사용하는 한림대 신경재생연구실에서의 strain 코드는 지도교수 이름 이니셜인 KWK로, allele 코드는  hallym university를 축약하여 hlu로 명명하였습니다. 따라서, 연구실에서 처음 만든 돌연변이 선충 allele은 ‘hlu1’이 되고, 이 allele을 가진 선충 strain의 이름은 ‘KWK1’로 명명되었습니다.
     

    이밖에 외부 DNA를 발현시킨 형질전환선충(Transgenic Worm)은 외부 DNA가 염색체로 삽입(Chromosomal Integration)되는 경우와 삽입되지 않고 extrachromosomal array로 존재하는 2가지 경우가 생길 수 있는데, chromosomal integration은 ‘Is’로, extrachromosomal array는 ‘Ex’로 표기합니다. 따라서, hluIs1, hluEx1 과 같이 연구실 allele 코드명 뒤에 Is1 혹은 Ex1 등을 덧붙여 표기할 수 있습니다. 또한, 외부 DNA 삽입이 한 카피만 일어난 경우에는 Is allele과 구분해서 Single-copy integration (Si)로 표기합니다. 즉, hluSi1 과 같이 쓸 수 있습니다. 이처럼 예쁜꼬마선충의 allele 이나 strain 이름은 매우 체계화되어 있어 편리하게 선충 자원(resource)을 관리할 수 있습니다.
     

    • Allele의 명칭은 어떻게 정해지나요?
    Print
  • 실험에 필요한 예쁜꼬마선충의 strain은 Caenorhabditis Genetics Center (CGC), National BioResource Project (NBRP), 그리고 예쁜꼬마선충 커뮤니티의 개인 연구실로부터 공유받을 수 있습니다. 

     

    CGC는 선충의 genetic stock을 수집, 유지 및 보관하는 기관이고, 미국 미네소타 대학교 내에 있습니다. CGC에서는 선충 strain과 관련 정보를 교육 기관 또는 비영리 단체의 연구원에게 제공하고 있기 때문에, 연구자들은 연구에 유용한 선충 strain을 위탁하여 보관하거나, 필요한 선충 strain을 요청하여 분양 받을 수 있습니다. 

     

    NBRP는 일본 의료 연구 개발 기관의 프로젝트로 선충 연구자들이 이용할 수 있도록 선충 생물자원을 수집하여 선충을 이용한 연구를 촉진하는 것을 목표로 합니다. NBRP도 CGC와 마찬가지로 선충의 유전 정보와 여러 돌연변이 선충을 저장하고, 연구자에게 제공하고 있습니다. 

     

    다만, CGC나 NBRP에서 보유하고 있지 않는 선충 strain인 경우, 해당 연구실에 직접 요청하여 분양 받을 수도 있습니다. 

     

    선충을 키우는 배지는 크기가 작아 이동이 편리하고 영양분이 없을 때 다우어(dauer)의 형태로 장기간 생존이 가능하며, 상온의 온도에서도 생존할 수 있기 때문에 요청한 선충은 국제 및 국내 배송을 통해 쉽게 분양 받을 수 있습니다. 
     

    • Strain을 보관하고 있는 곳은 어디인가요?
    Print