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지식 FAQ

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  • 동물모델로서 제브라피쉬의 장단점은 아래와 같습니다.

     

    1) 제브라피쉬 장점

     

    제브라피쉬는 척추동물로 작은 어항에 여러 개체를 사육할 수 있어서 마우스보다 비용을 절감할 수 있는 장점이 있습니다 . 한 쌍의 교배로 100마리 이상의 수정란을 매 주 생산할 수 있는데 배아가 투명하여 발생과정의 관찰이 용이하고, 초기 발생이 매우 빠르게 진행되어 수정 후 48시간 이내 대부분의 장기(organs and tissues)를 형성합니다. 이들 장기는 기능적으로 형태적으로 사람의 장기와 매우 유사하고 장기의 재생력이 뛰어나 관련 연구에도 활용되고 있습니다. 또 다른 장점으로 유전체 서열이 완성되었고 유전자 변이를 유도하는 것이 용이하여 현재까지 수많은 유전자 돌연변이 개체들과 형질전환개체들이 존재하기 때문에 여러 질병 모델 혹은 생물학적 질문에 대한 모델로 활용되고 있습니다. 또한, 사람과 70% 이상의 유전자가 보존되어 있고 약 사람의 질병과 연관되어 있는 유전자의 80% 이상이 존재하는 것으로 보고되었습니다. 

     

     

    2) 제브라피쉬 단점

     

    유전체의 중복성(duplication)이 존재하기 때문에 경우에 따라 관심있는 질병모델의 생산이 용이하지 않을 수도 있습니다. 또한, 포유류가 아니기 때문에 마우스보다는 사람의 생리 혹은 병리병태와 좀 더 다를 수 있어 사람에서 나타나는 질병이 제브라피쉬에서 정확하게 표현되지 않을 수 있는 단점이 있습니다. 사육적인 측면에서는 수생동물로 사육시설의 물의 질 관리상태에 따라 제브라피쉬의 건강상태가 급변할 수 있어 주의를 기울어야 합니다. 이러한 단점이 존재하지만 모든 동물모델들이 완벽하지 않고 각각의 장점을 잘 활용할 수 있는 연구를 통해 타 동물모델들과 상호보완적인 역할을 해 오고 있습니다.  


     

    3) 주 연구분야

     

    발생학, 유전학, 면역학, 재생학, 행동학, 정신건강학, 독성학, 생리학, 종양학, 대사학, 영양학 등 실로 많은 연구 분야에 활용되고 있습니다.   

    • 제브라피쉬가 인간 질병 연구를 위한 새로운 실험 동물 모델로 사용가능한 이유는 무엇인가요?
    • 다른 실험동물에 비해 제브라피쉬의 장점은 무엇인가요?
    • 1. Choi TY, Choi TI, Lee YR, Choe SK, Kim CH. Zebrafish as an animal model for biomedical research. Exp Mol Med. 2021;53(3):310-317. 
    • 2. Teame T, Zhang Z, Ran C, et al. The use of zebrafish (Danio rerio) as biomedical models. Anim Front. 2019;9(3):68-77.
    • 3. Lieschke GJ, Currie PD. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat Rev Genet. 2007;8(5):353-367.
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  • 제브라피쉬 연구를 시작하기 위해서는 우선 필수 기자재를 갖춰야 합니다. 장비의 규모와 종류에 따라 가격은 천차만별입니다만 초반에는 상당한 비용이 소비됩니다. 

     

    [제브라피쉬 사육시설]

     

    제브라피쉬는 열대성 어류이기 때문에 28.5°C로 온도를 맞춰줄 수 있는 사육시설이 꼭 필요합니다. 또한 일정수준의 산소포화도가 유지되어야 하기때문에 물을 지속적으로 순환시켜줘야 합니다. 물의 pH도 중요합니다. 이 모든 것을 갖춘 사육시설을 반드시 가지고 있어야 합니다. 현재 다양한 국내외 회사에서 꼭 필요한 모든 시스템을 갖춘 아파트형 사육시설을 판매하고 있습니다.   

     

     

    그림 1. 국산 제브라피쉬 사육시설 (회사명: S&F)

     

     

    [제브라피쉬 급여장치]

     

    제브라피쉬 급여장치는 치어용 로티퍼 배양장치와 성어용 brine shrimp(artemia) 배양장치로 나눌 수 있습니다. 치어와 성어 모두 건조 먹이를 통해 급여할 수도 있지만 생존율과 영양상태를 고려한다면 하루에 최소 1 ~ 2회는 로티퍼 또는 brine shrimp를 급여하는 것이 좋습니다.

     

     

    [로티퍼 생육 프로토콜]

     

    1. Rotifer는 1% 천일염 / 28~29℃ 조건에서 생육한다. 치어는 salt shock를 방지하기 위해 0.1% 해수염(sea salt)에서 생육한다.

    2. 이때 온도는 항온기를 이용한 중탕방식으로 정확하게 맞춰준다. 

    3. 공기펌프를 이용하여 약한 강도로 에어레이션(aeration)을 해준다(산소공급).

       (강한 에어레이션은 오히려 rotifer에게 좋지 않다.)  

    4. Rotifer는 클로렐라를 먹이로 하며 급여는 스포이트 또는 혈청분리관을 이용하여 일정량 분주한다.

      (너무 많은 잉여 클로렐라는 해로운 생육 환경을 조성하므로 배양액이 연두색 정도가 될 정도만 주는 것이 좋다.)

    5. 대사산물과 잉여 클로렐라는 바닥에 가라앉게 되어 생육에 안좋은 영향을 미치므로 제거한다. 

    6. 수득은 수요에 따라 다르지만 일반적으로 전체 배양액의 10%~30% 정도를 알맞은 거름망을 통해 분리하는 방식으로 진행한다.

       (이때 바닥에 대사산물을 함께 제거하는 것이 좋다.)

    7. 사용한 배양액만큼 신선한한 배양액을 다시 넣어주어 생육한다.

    8. 대사산물을 제거하는데 한계가 있으므로 2주에 한번은 새로운 배양 용기에 접종하는 것이 좋다. 

       생육환경이 좋으면 rotifer는 알을 2개~5개 가지고 다니지만, 환경이 좋지 않을 경우 알을 가지고 다니지 않는 개체가 많아진다.

     

     

    그림 2. Rotifer: 아래 동그란 것은 로티퍼 알입니다. (그림출처: https://www.intrafish.com/aquaculture/zooplankton-week-part-debunking-the-myths-about-rotifers/1-1-1221092)

     

    그림 3. 로티퍼 생육장치 (사진출처: 노현주)

     

     

    [Brine Shrimp 생육 프로토콜]
     

    Brine shrim는 적절한 온도, 소금 농도 그리고 강한 에어레이션이 주어지면 부화하게 됩니다 (18시간 정도 소요). 이 부화된 개체를 급여합니다.

     

    1. 20L Hatchery에 정수된 물 18L를 채운다.

    2. Hatchery에 에어펌프와 히터를 연결한다. (온도 28℃ 유지)

    3. 물 1L당 일반 굵은 소금(천일염) 20~25g을 넣은 후 소금을 녹인다.

    4. 소금을 다 녹인 후 brine shrimp를 물 1L당 2~2.5g을 넣는다.

    5. Brine shrimp를 넣은 후 백열등을 켜준다.

    6. 정상적으로 18시간 내에 부화가 시작되며, 24∼30시간이 되면 거의 (80%~90%) 부화한다.

    7. 24시간이 지나서 부화가 완성되었다고 판단될 때, 에어펌프와 히터를 분리한 후 백열등을 끈다.

    8. 부화된 후 공기공급을 멈추면 부화된 유생은 밑으로 가라앉고 껍질은 수면에 뜨게 된다.

    9. 가라앉은 유생을 껍질과 섞이지 않게 빼내어 소금물을 제거시킨 후 스포이드로 적당량을 급여 한다.

    10. 2~3일 정도 냉장고에 유지 보관이 가능하다.


    (더욱 자세한 내용은 지노믹디지인 홈페이지 참고: http://zebrafish.co.kr/)

     

    그림 4. Brine Shrimp (그림출처: Brinannica. https://www.britannica.com/animal/brine-shrimp)

     

     

     

    그림 5. 대형 배양장치 (사진: 노현주)

     

     

    [배양기]

     

    배아 배양을 위해서는 28.5°C 를 유지할 수 있는 배양기(인큐베이터)가 필요합니다. 더운 여름에는 일반 인큐베이터를 사용하면 온도 조절이 어려울 수 있기때문에 저온 인큐베이터를 구매하여 사용하는 것이 좋습니다. 또한 광주기(약 14시간)와 암주기(약 10시간)을 지켜주는 것이 좋기 때문에 배양기 내부에 타이머를 설치하여 빛(형광등, LED)을 공급해 주는 것을 추천합니다. 백열전구처럼 강한 열을 낼 수 있는 광원은 피하기 바랍니다.

     

    그림 6. 저온 인큐베이터 (사진출처: 노현주)

     

     

    [물고기 교배장치]

     

    제브라피쉬는 교배장치에 전날 저녁시간에 넣어둡니다. 암수는 동수로 넣어주고 중간에 칸막이를 설치하여 상호 접촉을 막아 놓습니다. 다음날 불이 켜지면 칸막이를 제거하여 자연교배를 유도합니다. 제브라피쉬 egg는 아래로 가라앉게 되고 이 egg를 수거하여 실험에 이용합니다.  

     

     

    그림 7. 물고기 교배장치 (출처: Techniplast. https://www.tecniplast.it/uk/product/07l-tank.html)

     

     

    [미세조작도구]

     

    제브라피쉬 배아 미세조작을 위해서는 우선 micropipette puller를 이용하여 매우 가느다란 주사바늘을 직접 만들어야 합니다. (주로 WPI제품 미세유리관을 사용) 

     

    그림 8. Micropipeete Puller 와 유리관

     

    Egg의 미세조작을 위해서는 1. Micromanipulator, 2. Injector, 3. 해부현미경이 필요합니다. 

     

      

    그림 9.  미세조작도구

     

     

     

     

     

     

     

     

    • 제브라피쉬 연구를 위해 기본적으로 갖춰야할 기자재는 무엇이 있나요?
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  • 볼바키아(Wolbachia)는 Wolbachia pipentis라는 단일 종을 이루고 있으며 alpha-proteobacteria에 속하는 그람 음성균입니다. 볼바키아는 모계로부터 유전되며 자연계의 절지동물(arthropods)의 60% 이상이 볼바키아와 공생하고 있다고 알려져 있습니다.

     

    볼바키아는 공생하는 숙주동물의 세포질 불합치(cytoplasmic incompatibility)를 유도하여 숙주동물이 암컷인 자손을 많이 낳도록 성비를 교란 시킵니다. 그러나 Drosophila melanogaster는 볼바키아에 감염되더라도 성비교란작용이 약하거나 거의 나타나지 않는다고 알려져 있습니다. 최근에는 초파리가 볼바키아에 감염되었을 때, 초파리의 항바이러스 능력이 향상된다는 연구도 보고되었습니다. 

     

    초파리가 볼바키아에 감염되더라도 눈에 띄는 표현형은 없기 때문에, 초파리 체내에 볼바키아가 있는지는 볼바키아 특이적인 프라이머를 이용한 PCR을 통해 확인합니다. 볼바키아를 제거하는 방법으로는 초파리에게 테트라사이클린 항생제를 먹이는 방법이 주로 사용됩니다. 

     

     

    그림. 볼바키아에 감염된 곤충 세포 (그림출처: https://www.labroots.com/trending/microbiology/3037/bacteria-aid-fight-zika)

     

     

    • 초파리를 감염시키는 Mite의 종류에는 어떤 것들이 있나요? Mite 감염을 예방하는 방법이 있나요? 만약 감염이 된다면 어떻게 하면 좋을까요?
    • 초파리에 공생하는 미생물(Gut Microbiome)은 무엇이 있나요?
    • 1. Hedges LM, Brownlie JC, O'Neill SL, Johnson KN. Wolbachia and virus protection in insects. Science. 2008;322(5902):702.
    • 2. Glaser RL, Meola MA. The native Wolbachia endosymbionts of Drosophila melanogaster and Culex quinquefasciatus increase host resistance to West Nile virus infection. PLoS One. 2010;5(8):e11977.
    • 3. Xu J, Cherry S. Viruses and antiviral immunity in Drosophila. Dev Comp Immunol. 2014;42(1):67-84.
    • 4. Miller WJ, Ehrman L, Schneider D. Infectious speciation revisited: impact of symbiont-depletion on female fitness and mating behavior of Drosophila paulistorum. PLoS Pathog. 2010;6(12):e1001214. 
    • 5. Cogni R, Ding SD, Pimentel AC, Day JP, Jiggins FM. Wolbachia reduces virus infection in a natural population of Drosophila. Commun Biol. 2021;4(1):1327.
    •  
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  • 초파리 동물 모델을 가지고 실험하는 실험실에 가장 위협이 되는 것이 바로 mite 감염(mite infestation) 입니다. 초파리를 감염 시키는 mite는 mite의 속(genus) 중 Gamasodes가 가장 흔하게 발견된다고 보고되고 있습니다. Gamasodes mites 감염은 초파리의 생식력, 수명 및 유전자 발현에도 영향을 끼치기 때문에 mite에 감염되지 않도록 주의해야 합니다.
     

     

    Gamasodes deutonymph (사진 출처: https://idtools.org/id/mites/invasive_mite/Invasive_Mite_Identification/key/Mesostigmata/Media/Html/Gamasodes.htm)

     

     

    [Mite 감염 예방법]

     

    1. 외부에서 유입되는 초파리 스톡은 2세대 정도 격리시킵니다.

      - Mite가 없는 것이 확인되기 전에는 스톡 뚜껑을 열지 않습니다.

     

    2. 초파리 스톡을 주기적으로 transfer 합니다.

      - Mite의 life cycle은 일반적으로 초파리보다 길다고 알려져 있습니다. 성체 초파리가 태어난 후 바로 새로운 배지로 옮겨준다면 mite 감염을 방지하는데 도움이 됩니다.

     

    3. 실험실을 깨끗하게 유지하기

      - Mite는 죽은 유기물의 사체 등을 먹으며 살아갑니다. 또한 mite와 mite 알은 에탄올에 취약하다고 합니다. 그러므로 초파리를 관찰하는 현미경, 벤치, CO2 패드 등을 실험 전에 항상 에탄올로 소독하고 하시기를 권합니다. 벤질 벤조에이트가 처리된 천 (10% benzyl benzoate in 95% ethanol)을 초파리를 유지하는 곳에 깔고 주기적으로 교체 하는 것도 mite 감염 예방에 도움이 될 수 있습니다.

     

     

    [Mite에 감염 되었다면?]

     

    Mite에 감염된 스톡은 바로 폐기처분합니다. 폐기처분할 때는 mite가 다른 실험실 공간에 노출되지 않도록 주의하고 고압멸균과정을 거쳐 mite가 살아있지 않도록 합니다. Mite에 감염된 스톡이 폐기처분 할 수 없는 중요한 라인이라면 성체 초파리를 매일 새로운 바이알에 1주일 동안 transfer합니다. Transfer 한 바이알에서 mite가 사라졌다면 이 라인을 3세대 정도까지 관찰 후 mite-free 한 상태임을 확인하고 실험에 사용하면 됩니다. 
     


     

    • 초파리는 Wolbachia에 감염된다고도 하던데, 무엇이며 어떻게 확인하며, 예방법 및 대처 법에는 어떤 것들이 있나요?
    • 초파리가 Mite에 감염되면 어떻게 되나요?
    • Mite 감염이 무엇인가요?
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  • Germ-free (GF) 초파리는 장내미생물이 없는 무균 초파리를 뜻합니다. 무균 초파리는 장내미생물의 역할과 기능을 규명하기위해 만들어집니다. 장내미생물은 숙주 동물의 장 속에 공생하고 있는 미생물로 장내미생물이 지니는 유전자 집합체를 장내 마이크로바이옴(gut microbiome)이라고 합니다. 장내 마이크로바이옴은 숙주 동물의 영양분 흡수, 면역 시스템 조절, 뇌 발달 및 행동 조절 등에 중요한 역할을 하는 것이 증명되었고 현재도 많은 연구가 진행 중 입니다. 

     

    초파리는 다른 모델 동물에 비해 상대적으로 쉽게 무균초파리나 특정 미생물만을 가지고 있는 초파리(gnotobiotic fly)를 만들 수 있어, 장내미생물과 숙주의 상호작용을 규명하는 모델 시스템으로 활발히 활용되고 있습니다. 무균 초파리를 만들 때는 차아염소산나트륨(sodium hypochlorite)을 이용해 초파리 알의 chorion을 벗겨내는 방법(dechorionation)이 주로 사용됩니다. 제작 방법은 아래 그림을 참고하시기 바랍니다. 
     

     

     

    [무균 초파리 만드는 법]

     

    ① 이스트가 도포된 플레이트를 이용해 초파리 알을 모은다.

    ② 모아진 알을 망으로 옮겨 담고 초파리 알 겉에 묻은 이스트를 씻어낸다.

    ③ 차아염소산나트륨(sodium hypochlorite)을 이용해 알의 chorion을 벗겨낸다. (dechorionation)

    ④ 남아있는 차아염소산나트륨을 씻어낸다.

    ⑤ 무균화 된 알을 멸균된 배지가 들어있는 바이알에 뿌린다.

     

    * ② 단계부터 클린 벤치 안에서 진행함.

     

    • 초파리는 Wolbachia에 감염된다고도 하던데, 무엇이며 어떻게 확인하며 예방법 및 대처법에는 어떤 것들이 있나요?
    • 초파리도 장내미생물이 있나요?
    • 1. Douglas AE. The Drosophila model for microbiome research. Lab Anim (NY). 2018;47(6):157-164. 
    • 2. Trinder M, Daisley BA, Dube JS, Reid G. Drosophila melanogaster as a High-Throughput Model for Host-Microbiota Interactions. Front Microbiol. 2017;8:751. 
    • 3. Nagpal J, Cryan JF. Microbiota-brain interactions: Moving toward mechanisms in model organisms. Neuron. 2021;109(24):3930-3953.
    • 4. Shin SC, Kim SH, You H, et al. Drosophila microbiome modulates host developmental and metabolic homeostasis via insulin signaling. Science. 2011;334(6056):670-674.
    •  
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  • 초파리의 장기는 사람의 장기와 형태는 다르지만 기능적으로 유사한 면이 많습니다. 또한, 사람에게 질병을 유발하는 유전자 결함 중 약 70% 정도의 유전자가 초파리에도 보존돼 있어 인간의 질병을 연구하는 데 널리 사용되고 있습니다.  

     

    초파리의 장기가 사람의 장기와 어떻게 기능적으로 대응되는지는 아래 그림을 참고하시기 바랍니다. () 안 글씨는 각각의 장기에 대응하는 사람의 장기 이름입니다.
     

     

    * 그림출처: Bilder D et al. Nat Rev Cancer. 2021;21(11):687-700.

    • 초파리 애벌레는 숨을 어떻게 쉬나요?
    • 초파리와 사람의 유사성은 어느 정도 인가요?
    • 초파리도 심장이 있나요?
    • 1. Bilder D, Ong K, Hsi TC, Adiga K, Kim J. Tumour-host interactions through the lens of Drosophila. Nat Rev Cancer. 2021;21(11):687-700.
    • 2. Droujinine IA, Perrimon N. Interorgan Communication Pathways in Physiology: Focus on Drosophila. Annu Rev Genet. 2016;50:539-570. 
    • 3. Ugur B, Chen K, Bellen HJ. Drosophila tools and assays for the study of human diseases. Dis Model Mech. 2016;9(3):235-244.
    • 4. Padmanabha D, Baker KD. Drosophila gains traction as a repurposed tool to investigate metabolism. Trends Endocrinol Metab. 2014;25(10):518-527.
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  • 신경망의 신호는 전기적 자극이나 신경전달물질(neurotransmitter)의 분비를 통해 전달됩니다. 아래에 설명하는 이온 채널(ion channel) 및 신경전달물질과 관련된 단백질들을 Gal4-UAS 시스템을 이용하여 표적 신경망 특이적으로 발현을 유도/억제하면 시키면 해당 신경망의 기능을 조절할 수 있습니다. 또한 세포자멸(apoptosis)을 유도하여 신경세포를 제거하면 연결된 신경망의 기능을 억제할 수 있습니다.

     

     1) 신경 활성 유도

     

      - UAS-TrpA1: 온도에 반응하여 열리는 양이온 채널로 약 30°C의 온도에서 신경망의 활성을 유도합니다. 

     

     2) 신경 활성 억제 

     

      - UAS-Shits : 온도에 반응하여(29°C 이상) 신경시냅스에서 시냅스 소포(synaptic vesicle)의 순환을 막고 신경전달물질을 분비를 억제합니다. 

      - UAS-GtACR:  빛에 반응하여 열리는 음이온 채널로 515nm의 파란 빛을 비추면 신경망의 활성을 억제합니다.

      - UAS-TeTxLC: 신경시냅스에서 신경전달물질의 전달을 방해하는 파상풍 독소(tetanustoxin)로 신경신호 전달을 억제합니다. 

      - UAS-Receptor-RNAi: 신경전달 물질에 대한 특정 수용체의 발현을 억제하여 신경신호 전달을 억제합니다.

     

     3) 신경세포 자멸

     

      - UAS-rpr, hid: 세포자멸(apoptosis)을 유도하여 신경세포를 제거합니다. 

     

     

    • 초파리 신경망의 신호전달을 유도하는 방법에는 무엇이 있나요?
    • 초파리 신경망의 신호전달을 억제하는 방법에는 무엇이 있나요?
    • 1. Hamada FN, Rosenzweig M, Kang K, et al. An internal thermal sensor controlling temperature preference in Drosophila. Nature. 2008;454(7201):217-220.
    • 2. Praefcke GJ, McMahon HT. The dynamin superfamily: universal membrane tubulation and fission molecules?. Nat Rev Mol Cell Biol. 2004;5(2):133-147.
    • 3. Mohammad F, Stewart JC, Ott S, et al. Optogenetic inhibition of behavior with anion channelrhodopsins. Nat Methods. 2017;14(3):271-274.
    • 4. Sweeney ST, Broadie K, Keane J, Niemann H, O'Kane CJ. Targeted expression of tetanus toxin light chain in Drosophila specifically eliminates synaptic transmission and causes behavioral defects. Neuron. 1995;14(2):341-351.
    • 5. Hsu CD, Adams SM, O'Tousa JE. Rpr- and hid-driven cell death in Drosophila photoreceptors. Vision Res. 2002;42(4):507-516.
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  • 유전형질 교배를 위해 버진 암컷을 준비하는 것은 수컷을 준비하는 것에 비해 더 많은 숙련이 필요합니다. 대량으로 버진 암컷을 모을 수 있다면 실험 준비를 위한 시간을 절약할 수 있습니다.

     

     1) 수컷 세포자멸

     

      - 생식능력을 가진 수컷은 Y 염색체를 가지고 있습니다. 여기에 세포자멸(apoptosis) 유전자를 넣어 배아 발생단계에서 발현을 유도하면 해당 유전자를 가지고 있는 수컷 초파리는 모두 죽게 됩니다.

      - 열에 반응하여 유전자 발현을 유도할 수 있는 heat-shock promoter 와 세포자멸 유전자인 hid(head involution defective)를 연결하여 일시적으로 고온에서 세포자멸을 유도할 수 있습니다. (P{hs-hid}Y)

     

     2) 수컷 제거 세포자멸 유도 방법

      - Y 염색체를 가진 초파리를 23°C 환경에서 2-3일 간 사육병에 알을 받고 성충을 모두 제거 합니다.

      - 알을 받고 4-5일 후 애벌레가 나오면 사육병을 한시간 정도 37°C 수조에 담가 세포자멸 유전자의 발현을 유도합니다. (애벌레가 열을 피해 수면위로 올라오지 못하도록 충분히 담가야 합니다.)

      - 이후 암컷 초파리만 성충으로 성장합니다.

     

     

    • 초파리 암컷 버진 (Virgin)을 골라야 하는 이유는 무엇인가요?
    • 초파리 애벌레에서 암수 고르는 방법이 있나요?
    • 초파리 암컷 버진을 쉽게 고를 수 있는 방법이 있나요?
    • 암컷 버진을 대량으로 모으려면 어떻게 해야하나요?
    • 1. Starz-Gaiano M, Cho NK, Forbes A, Lehmann R. Spatially restricted activity of a Drosophila lipid phosphatase guides migrating germ cells. Development. 2001;128(6):983-991.
    • 2. Bloomington Drosophila Stock Cencer. Heat Treatment Method for P{hs-hid} Stocks. https://bdsc.indiana.edu/stocks/misc/hs-hid_method.html
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  • 초파리 암컷은 한번의 짝짓기를 통해 3-400 개의 정자를 저장하고 알을 낳을 수 있습니다. Gal4-UAS 시스템 등의 실험을 위해 서로 다른 유전자의 암수를 교배하는 경우, 짝짓기를 하기 이전의 버진 암컷을 수컷과 교배해야 원하는 유전형의 자손을 얻을 수 있습니다. (버진이 아닌 암컷을 이용하면 배양에 이용한 수컷의 유전형질을 알 수 없습니다.)

     

     1) 암컷의 버진 구분

     

      - 초파리 암컷은 알에서 깨어난지 8-10시간 이내에는 짝짓기를 하지 않기 때문에 성충으로 탈피하는 파리를 8시간 마다 골라내면 짝짓기 하지 않은 버진 암컷을 골라낼 수 있습니다.

      - 초파리는 탈피 후 시간이 지남에 따라 껍질이 어둡게 변합니다. 또한 깨어난지 얼마 되지 않은 파리의 경우 배 부분에 어두운 색 반점인 meconium(태변)이 보입니다. 표피가 밝은 가운데 검은 반점이 보이는 파리를 골라내어 버진 암컷을 모을 수 있습니다.

      - 확실한 구분이 어려운 경우 암컷 만을 골라 사육 병에 두고 24 시간 동안 두고 알을 관찰합니다. 버진 암컷이 낳은 알은 무정란이므로 애벌레가 생기지 않기 때문에 버진 암컷 임을 확인할 수 있습니다.

     

     2) 수컷의 버진 구분

      - 초파리 수컷은 암컷과 달리 정자만을 제공하기 때문에 교배를 위한 수컷은 반드시 버진을 고를 필요는 없습니다.

     

    그림 1. (A, B) 깨어난 지 1시간 이내의 암컷 초파리: 배 부분이 밝고 태변(meconium)이 보임, (C) 깨어난 지 8시간 된 암컷 초파리: 배 부분이 상대적으로 어두움

    • 초파리 애벌레에서 암수 고르는 방법이 있나요?
    • 암컷만 나오는 파리를 만들 수 있나요?
    • 초파리 암컷의 버진은 어떻게 고르나요?
    • 수컷도 버진을 골라야 하나요?
    • 유전형질 교배에서 주의할 점은 무엇인가요?
    • 1. Bloch Qazi MC, Heifetz Y, Wolfner MF. The developments between gametogenesis and fertilization: ovulation and female sperm storage in Drosophila melanogaster. Dev Biol. 2003;256(2):195-211.
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  • 초파리는 냄새로 먹이를 찾고 여기에 모여들어서 짝짓기를 합니다. 또한 한 쌍의 파리가 알을 낳기 시작하면 열흘 이내에 수백 배로 증가하기 때문에 알을 낳을 수 있는 환경을 제거하는 것이 중요합니다.

     

     1) 초파리 트랩 제작

     

      - 종이컵에 과일 껍질이나 식초/맥주 등을 약간 담아 뚜껑을 덮고 작은 구멍을 뚫어 놓으면 파리가 모여듭니다. (식초/과일 냄새, 알콜 냄새를 좋아합니다.) 

      - 구멍이 너무 크면 파리가 드나드는 파리 집이 되기 때문에 초파리가 간신히 들어갈 정도의 크기로 작아야 합니다. (0.5 mm 이하) 

      - 세제를 조금 섞으면 파리가 그대로 빠져 죽기 때문에 처리가 쉽습니다. 

     

     2) 초파리 서식 환경 제거 

      - 주변에 먹을 것이 없어야 잘 모여들어서 초파리 트랩에 포집이 잘 됩니다.

      - 과일 껍질, 음식 쓰레기 등을 밀봉하여 파리가 모여들지 않도록 해야 합니다.

     

     

    *그림출처: Lasa R et al. PLoS One. 2017;12(11):e0188350. 

     

     

    • 초파리 트랩 만드는 방법을 알려주세요
    • 트랩 이외의 다른 방법에는 어떤 것들이 있나요?
    • 1. Lebreton S, Becher PG, Hansson BS, Witzgall P. Attraction of Drosophila melanogaster males to food-related and fly odours. J Insect Physiol. 2012;58(1):125-129. 
    • 2. Giang T, He J, Belaidi S, Scholz H. Key Odorants Regulate Food Attraction in Drosophila melanogaster. Front Behav Neurosci. 2017;11:160. 
    • 3. Lasa R, Tadeo E, Toledo-Hérnandez RA, Carmona L, Lima I, Williams T. Improved capture of Drosophila suzukii by a trap baited with two attractants in the same device. PLoS One. 2017;12(11):e0188350. 
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