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지식 FAQ

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  • Grimace Scales (찡그린 표정 척도)1

     

    NC3Rs에서 제안한 마우스2, 랫드3, 토끼4의 찡그린 표정 척도를 보면 눈의 좁아짐, 수염의 위치와 모양변화 같은 여러 얼굴표정의 변화를 점수화 하는 것이 시술 후 통증에 대한 임상평가로 사용될 수 있습니다. 실험과 연관된 표정인지를 짧은 시간동안 실시간으로 평가해야 하며, 깨어있는 동물에서만 이 척도를 사용해야 합니다.  


    NC3Rs 은 동물실험을 대체하고 개선하며 줄이는 데 초점을 맞춘 연구와 정보를 제공하는 영국의 연구기관입니다. 이 기관의 목표는 과학적 발전과 동시에 동물복지를 고려한 연구방법을 촉진하는 것입니다.

     

     

       

    * 그림출처: NC3Rs. Grimace scales.

    • 동물이 아프면 표정으로 나타내나요?
    • 1. NC3Rs. Grimace scales. https://www.nc3rs.org.uk/3rs-resources/grimace-scales 
      2. Langford DJ, Bailey AL, Chanda ML, et al. Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse. Nat Methods. 2010;7(6):447-449.
      3. Sotocinal SG, Sorge RE, Zaloum A, et al. The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions. Mol Pain. 2011;7:55.
      4. Keating SC, Thomas AA, Flecknell PA, Leach MC. Evaluation of EMLA cream for preventing pain during tattooing of rabbits: changes in physiological, behavioural and facial expression responses. PLoS One. 2012;7(9):e44437. 
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  • 1. 환경풍부화 프로그램의 필요성


    -환경풍부화의 주요 목표는 동물종을 고려하여 선호하는 감각 및 운동자극을 제공하여 복지를 향상시키는 것입니다1, 2
    -마우스에서는 주로 둥지물질(nesting materials)과 마우스 집(house)를 제공해 주는데, 이런 물질들은 마우스의 체온 조절 및 스트레스 완화에 도움이 됩니다3, 4, 5.   
    -많은 연구자들이 환경풍부화가 실험의 표준화를 저해할 수 있다고 우려하였으나 마우스를 이용한 실험에서 그런 관점을 뒷받침할 만한 증거를 찾지 못했습니다6.
     

     

    2. 환경풍부화 프로그램의 주의사항


    -다른 환경적 요인(예: 케이지 면적, 빛, 소음, 온도, 동물사육 프로그램)과 마찬가지로 환경풍부화는 동물의 표현형과 실험결과에 영향을 미칠 수 있으므로, 독립적인 변수로 간주하고 적절히 통제해야 합니다. 특히 경쟁을 초래하거나 공격성을 강화시킬 수 있으므로 정기적으로 점검해야 하며 자주 변경하는 것은 적절하지 않습니다7.
     

    • 환경풍부화 프로그램을 갑자기 추가하라고 하는데 실험에 변수가 되지 않을까요?
    • 1. National Research Council. Psychological Well-being of Nonhuman Primates. National Academy Press; 1998.
    • 2. Young RJ. Environmental Enrichment for Captive Animals, UFAW Animal Welfare Series. Blackwell Science; 2003.
    • 3. Gaskill BN, Rohr SA, Pajor EA, Lucas JR, Garner JP. Some like it hot: Mouse temperature preferences in laboratory housing. Appl Anim Behav Sci. 2009;116:279–285.
    • 4. Gordon CJ. Temperature Regulation in Laboratory Animals. Cambridge University Press; 1993.
    • 5. Gordon CJ. Effect of cage bedding on temperature regulation and metabolism of group-housed female mice. Comp Med. 2004;54(1):63-68.
    • 6. Wolfer DP, Litvin O, Morf S, Nitsch RM, Lipp HP, Würbel H. Laboratory animal welfare: cage enrichment and mouse behaviour. Nature. 2004;432(7019):821-822.
    • 7. Bergmann P, Militzer K, Büttner D. Environmental enrichment and aggressive behaviour: influence on body weight and body fat in male inbred HLG mice. J Exp Anim Sci. 1994;37:59–78.
       
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  • 1. 경추탈구 방법의 적용


    -실험의 목적에 따라 시료 채취를 위해 안락사용 약물을 이용할 수 없을 때 사용하는 물리적 안락사 방법입니다1

    -마우스 외에 랫드, 조류, 미성숙한 토끼에서 시행할 수 있는 방법입니다2.  

    -연구자는 실험 목적에 따른 물리적 경추탈구가 필요한 과학적 정당성을 제시하여 IACUC에 승인 받아야 합니다.

     

    2. 경추탈구 방법의 주의 사항


    -동물에게 고통을 주지 않도록 성공적으로 신속하게 경추탈구를 하기 위해 연구자는 사체나 마취된 동물을 이용하여 충분히 연습해서 숙련되어야 합니다. 또한 CO2 gas 또는 약물을 함께 사용하는 것을 적극 고려해야 합니다3, 4

    -경추탈구 방법은 이를 수행하거나 관찰하는 사람에게 심리적으로 불편한 감정을 줄 수 있으므로 이 방법을 결정하고 지시하는 관리자와 감독자는 이 문제에 대해 민감하게 고려해야 합니다5, 6, 7, 8.
     

     

    • 마우스 안락사를 위해 경추탈구를 해야 하는데 쉽게 배울 수 있나요?
    • 1. National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals, 8th edition. The National Academies Press; 2011.
      2. Leary S et al. AVMA Guidelines for the Euthanasia of Animals: 2020 Edition. 2020.
      3. Klaunberg BA, O'malley J, Clark T, Davis JA. Euthanasia of mouse fetuses and neonates. Contemp Top Lab Anim Sci. 2004;43(5):29-34.
      4. Pritchett-Corning KR. Euthanasia of neonatal rats with carbon dioxide. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2009;48(1):23-27.
      5. Arluke A. Uneasiness among laboratory technicians. Occup Med. 1999;14(2):305-316.
      6. National Research Council (US) Committee on Recognition and Alleviation of Distress in Laboratory Animals. Recognition and Alleviation of Distress in Laboratory Animals. National Academies Press (US); 2008.
      7. Rollin B. Euthanasia and moral stress. In: DeBellis R, ed. Loss, Grief and Care. Haworth Press; 1986.
      8. Wolfle T. Laboratory animal technicians. Their role in stress reduction and human-companion animal bonding. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1985;15(2):449-454.
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  • 1. 마취제 vs 진통제 


    전신마취제는 중추신경계통에 영향을 주어 의식소실을 일으키므로 결과적으로 수술 중에는 환자가 통증을 느끼지 못합니다. 진통제는 의식을 유지한 채로 신경전달물질의 전달을 억제하거나 통증중추에 작용하여 일정시간 동안 통증을 완화시킵니다.

     

     

    2. 선제적 진통제의 필요성


    선제적 진통제 투여는 수술 전 및 수술 중에 진통제를 투여하는 절차를 말합니다. 선제적 진통제 투여는 수술 중 환자의 안전성을 향상시키고 수술 후 경험하는 통증을 줄여 수술 후 관리와 환자의 복지에 좋은 영향을 줍니다1. 진통제 뿐만 아니라 국소마취제 또한 의식소실 없이 진통효과를 나타내므로 선제적 진통제로 사용됩니다. 

    • 마취제에는 진통효과가 없나요?
    • 1. Coderre TJ, Fundytus ME, McKenna JE, Dalal S, Melzack R. The formalin test: a validation of the weighted-scores method of behavioural pain rating. Pain. 1993;54(1):43-50. 
      2. Hedenqvist P, Roughan JV, Flecknell PA. Effects of repeated anaesthesia with ketamine/medetomidine and of pre-anaesthetic administration of buprenorphine in rats. Lab Anim. 2000;34(2):207-211. 
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  • 1. 비약물적 통증관리의 필요성

     

    수술 후 통증관리와 실험으로 인한 통증관리를 위해서 일차적으로 진통제를 이용한 약물적 처치가 고려되어야 합니다. 단, 약물의 이용이 실험에 미치는 방해요소라는 증거가 확실할 경우, 비약물적 통증관리 절차를 계획하여 IACUC의 승인을 받아야 합니다.  
    NRC 가이드에 따르면, 통증의 비약물적 조절 또한 효과적이므로 수술 후 또는 시술 전후 관리로서 고려하라고 제안하고 있습니다1. 비약물적 통증관리를 시행할 경우에는 진통약물을 이용하는 경우보다 더 자주 동물을 관찰하여 기록하고 그 경과의 효과를 신속하게 평가해야 합니다. 

     

     

    2. 비약물적 통증관리 방법 

     

    -회복 및 휴식공간 또는 environmental enrichment 의 제공: 소음이 없고 어두운 조명, 체온유지가 가능한 안락하고 따뜻한 장소나 엔리치먼트 도구(house, nesting 등), 가온패드

    -상처와 수술부위의 적절한 소독과 드레싱(bandage) 관리
    -경구 또는 비경구 수액 처치, 기호성 높은 보조적 식이의 제공
    -국소마취제(lidocaine, bupivacaine) 연고나 주사제를 이용한 통증관리


    예) 척수손상 수술 후 배뇨장애가 예상될 경우, 사료의 섭취가 어려울 수 있으므로 바닥에 사료를 놓아 주거나 부드럽고 기호도 높은 보조식이를 제공하고 인공적 배뇨를 위해 하루 2회 이상 복부 마사지 관리
    예) 수술 후 봉합부위의 진통을 위해 수술 후 3일 이상 리도카인 마취제 연고를 하루 2번 술부에 적용
     

     

    • 진통제가 실험결과에 영향을 줄 것 같은데 대안은 없을까요?
    • 1. National Research Council (US) Committee on Recognition and Alleviation of Pain in Laboratory Animals. Recognition and Alleviation of Pain in Laboratory Animals. Washington (DC): National Academies Press (US); 2009.
    •  
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  • 1. 오가노이드 정의
    오가노이드(Organoid)란 장기를 뜻하는 “Organ”과 유사함을 뜻하는 접미사 “oid”가 결합된 신조어로 실험실에서 인위적으로 만든 3차원 세포 응집체 즉, 장기 유사체를 의미합니다1. 2009년 네덜란드 후브레히트 연구소의 Hans Clevers가 주도한 연구에서 마우스 내부 장기의 줄기세포로 작은 장기를 만들어 ‘오가노이드’라는 명칭을 붙였습니다2. 1차 조직인 인체유래 암조직 또는 정상조직으로부터 유래한 세포나 배아줄기세포(ESC), 유도만능줄기세포(iPSC) 등 다양한 세포를 3차원 배양법으로 응집하여 배양한 단순화된 장기유사체입니다. 
     

    2. 오가노이드의 장점과 단점
    2차원 세포배양과 유사하여 조작이 간단하면서 세포보다 생체장기와 높은 유사성을 보이기 때문에 동물모델보다 윤리적, 경제적으로 부담이 적은 유력한 실험모델로 평가되고 있습니다3. 기존 2차원 세포 모델에서 관찰하기 어려운 조직 내 세포 간 상호작용, 세포 이동, 약물 분포 등 복합적인 정보를 획득할 수 있으므로 조직의 구조 및 기능 측면에서 높은 재현성을 나타냅니다4. 그러나 3차원 모델로의 활용이 기대되고 있으나 실제 조직의 혈관 등 복잡한 환경 구현이 어려운 한계를 보입니다5.

     

     

    3.  오가노이드의 응용
    향후 심화 기술 개발을 통한 장기의 크기 확대가 이루어지면 장기 이식 및 세포 치료에 사용될 수 있을 것으로 바이오 산업 분야에서 기대하고 있습니다6. 주요 응용 분야에는 질환 모델링, 약물 스크리닝, 재생의료, 감염병 연구, 약물평가 등이 있습니다7, 8

     

    • 동물실험 대체법으로 오가노이드는 신뢰할만 한가요?
    • 1. 한국생명공학연구원 생명공학정책연구센터. 오가노이드의 현재와 미래. 2021.08.
      2. 조선일보 진현경. 개인 맞춤형 장기 개발 시대 열리나. 2022. 10. https://kid.chosun.com/site/data/html_dir/2022/10/23/2022102301325.html
      3. 식품의약품안전처. 장기 유형별 오가노이드 구축 및 활용 사례집. 2022.04.
      4. 건국대학교 김시윤. 줄기세포 기반 중개의학 활용 연구-줄기세포 및 오가노이드 중심. 2021.12.
      5. 한국생명공학연구원 생명공학정책연구센터. 글로벌 오가노이드 시장현황 및 전망. 2021.06.
      6. 안지영, 유종만. 오가노이드(Organoids) 시장현황. 2019.09.
      7. Shariati L, Esmaeili Y, Haghjooy Javanmard S, Bidram E, Amini A. Organoid technology: Current standing and future perspectives. Stem Cells. 2021;39(12):1625-1649.
      8. 맹주은, 김순찬, 송명현, 정나현, 구자록. 오가노이드를 활용한 약물 검색 플랫폼. Journal of Digestive Cancer Research. 2022;10(2):82-91.
      9. 식품의약품안전평가원. 식의약 R&D 이슈 보고서 오가노이드. 2023.03.
    •  
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  • 백색지방은 전신에 광범위하게 분포되어 있으나 갈색지방은 견갑부, 액와부, 신장 주위, 흉각 내 등에 한정되어 분포되어 있으며 갈색 지방의 양은 보통 마우스 체중의 1% 이내로 알려져 있습니다.

     

    백색지방과 갈색지방의 주요한 차이점은 백색지방조직(White Adipose Tissue)은 에너지를 저장하는 역할을 하는 반면, 갈색지방조직(Brown Adipose Tissue)은 철분을 다량 함유하고 있는 갈색 미토콘드리아가 다수 존재하여 갈색을 띠며 열을 발생시켜 체온을 유지하고 에너지를 소모시키는 역할을 합니다.

     

     

     


     

    • 마우스에서 갈색 지방조직 (Brown Adipose Tissue)을 얻으려고 합니다. 어느 부위에서 채취하면 될까요?
    • 1. Jung SM, Sanchez-Gurmaches J, Guertin DA. Brown Adipose Tissue Development and Metabolism. Handb Exp Pharmacol. 2019;251:3-36.
    • 2. Zhang F, Hao G, Shao M, et al. An Adipose Tissue Atlas: An Image-Guided Identification of Human-like BAT and Beige Depots in Rodents. Cell Metab. 2018;27(1):252-262.e3. 
    • 3. Pollard AE, Carling D. Thermogenic adipocytes: lineage, function and therapeutic potential. Biochem J. 2020;477(11):2071-2093.
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  • 마이코플라즈마(Mycoplasma)에 오염된 세포는 동물실험에 사용해서는 안 됩니다. 세포가 마이코플라즈마에 오염되면 형태적, 기능적 이상을 일으켜 세포의 대사 및 성장 저해, 모양의 변화, 단백질 및 유전자 발현 변화, transfection 시 효율 저하 등의 변화가 일어나 세포의 고유한 특성을 잃게 됩니다. 또한 오염된 세포를 barrier 시설 내로 반입하여 동물실험을 수행할 경우 미생물 감염사고의 원인이 될 수 있습니다. Hans G Drexler 등의 연구1에 따르면 primary cell culture의 1%, 초기 계대배양세포 중 5%, 사람 또는 동물 세포를 연속 배양할 경우 15~35%가 세포배양 시 마이코플라즈마에 오염되었다는 보고도 있습니다. 마이코플라즈마 오염 여부는 세포 펠렛 또는 세포 배양액을 이용한 PCR 검사로 비교적 간단하게 확인할 수 있습니다. 

     


    * Mycoplasma 란?

    자가 증식 능력을 가진 매우 작은 크기(0.2~0.8μm)의 원핵 생물로 일반적인 필터로는 제거할 수 없음. 세포 벽이 없기 때문에 페니실린 계열의 항생제는 예방에 효과가 없으며 광학 현미경으로는 관찰이 불가능하여 오염 여부를 확인하기 어려움. 

    • 암세포를 마우스에 이식하려고 하는데 이식 전 세포가 마이코플라즈마에 오염 되었는지 확인해야 할까요?
    • 1. Peterson NC. From bench to cageside: Risk assessment for rodent pathogen contamination of cells and biologics. ILAR J. 2008;49(3):310-315.
      2. Drexler HG, Uphoff CC. Mycoplasma contamination of cell cultures: Incidence, sources, effects, detection, elimination, prevention. Cytotechnology. 2002;39(2):75-90.
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  • 마취에 대한 부작용 중 하나로 각막이 건조되고 손상되어 각막 궤양이 발생할 수 있습니다. 눈동자 가로 방향으로 흰색 또는 회색의 띠모양이 관찰되는데 이를 띠모양각막병증(Band Keratopathy)라고 합니다. 주로 ketamine과 xylazine을 이용한 마취 시 자주 관찰될 수 있습니다. 이러한 증상을 예방하기 위하여 Yohimbine(Xylazine의 길항제)을 사용하여 마취를 즉시 깨우거나, 마취 동안 각막이 건조되는 것을 예방하기 위하여 안 연고 등 사용을 고려해 볼 수 있습니다. 


     

          

    * 그림출처: 왼) Koehn D et al. PLoS One. 2015.  오) 2022년 KCLAM LOOK2002 전현정 박사 발표자료

     

    • 마우스 마취를 오래하면 마우스 눈 색깔이 변하는데 왜 그런 걸까요?
    • 1. Koehn D, Meyer KJ, Syed NA, Anderson MG. Ketamine/Xylazine-Induced Corneal Damage in Mice [published correction appears in PLoS One. 2015;10(9):e0137559]. PLoS One. 2015;10(7):e0132804.
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  • 동물이용 생물안전 2등급(ABSL2)시설을 안전하게 이용하기 위해서는 다음과 같은 사항에 주의해야 합니다.

     

    - 감염구역의 동물실을 출입하는 인원은 사전에 이용방법에 대한 추가 교육, 건강검진 및 필요시 백신 접종 등을 받아야 합니다. 

    - 감염구역에 출입할 때에는 적절한 개인보호장비를 착용하도록 합니다. 특히 에어로졸이 발생할 가능성이 높은 경우를 포함하여 감염 물질을 사용하는 모든 활동에는 이중 장갑의 착용 및 N95 호흡기와 안전고글의 사용을 권고 합니다.

    - 깔짚 교환시는 에어로졸의 발생을 최소화하기 위하여 2등급의 케이지 체인지 스테이션 위에서 작업하도록 합니다. 감염 물질을 다루는 모든 작업은 생물안전작업대 내에서 수행해야 하며, 만약 생물안전작업대 사용이 어려울 경우 개인보호장구와 더불어 다른 일차적인 안전 장치를 사용해야 합니다.

    - 실험종료 후 실험실을 떠나기 전 및 오염이 확인되거나 오염이 의심되는 물질을 다룬 후에는 반드시 작업대 표면을 적절한 소독약으로 닦아서 오염물질을 제거해야 합니다. 또한 생물학적 위해 물질을 엎질렀을 때에는 biohazard spill kit를 사용하여 즉시 오염을 제거하도록 합니다.

    - 사용한 케이지는 멸균 전까지 복도에 보관 시 반드시 필터가 있는 케이지 뚜껑 등으로 덮어두어야 합니다. 
    - ABSL-2 구역에서 사용한 깔짚을 비롯하여 감염을 유발할 수 있는 모든 물질 (조직, 사체, 깔짚, 사료, 주사기 혹은 그 외의 폐기물 등)은 사육 구역을 벗어나기 전에 고압증기 멸균 또는 화학약품처리 등 생물학적 활성을 제거할 수 있는 과정을 거쳐야 합니다.
     

    • 마우스에 2등급의 생물학적 위해물질을 투여하는 실험의 경우 실험 전후의 주의사항에 대해 알려주세요
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