이전 재생 정지 다음

닫기

지식 FAQ

  • 동물별
  • 분야별
  • 첫째, 예쁜꼬마선충 신경세포의 퇴행은 형광 단백질을 이용해 신경세포에 표지하여 신경세포의 손상 정도, 구조적/양적 변화를 관찰하여 신경퇴행의 정도를 평가할 수 있습니다. 예쁜꼬마선충에서 보이는 신경 퇴행은 신경세포의 세포체가 결손되거나 신경돌기(축삭과 수상돌기)가 가늘어지며 물집처럼 구형을 이루는 양상을 나타냅니다. 신경퇴행이 더 악화되면 신경세포 간의 신경돌기가 끊어져 있는 모습을 관찰할 수 있습니다1, 2

     

    * 그림출처: Huang X et al. Nat Commun. 2023;14(1):6137.

     

    둘째, 신경퇴행과 연관된 유전체 및 단백체 분석을 통하여 신경퇴행에 따른 분자적인 변화를 평가함으로써 신경퇴행을 감지합니다3

     

    * 그림출처: Koopman M et al. MicroPubl Biol. 2023;2023:10.17912/micropub.biology.000766.

     

    셋째, 신경세포의 퇴행은 예쁜꼬마선충의 인지능력, 움직임 그리고 운동능력에 영향을 미칠 수 있습니다. 신경퇴행에 따른 예쁜꼬마선충은 먹이가 있음에도 이를 인지하지 못하고 계속 먹이를 찾기 위해 배지를 이동하거나 좋아하는 냄새와 싫어하는 냄새를 구별하지 못하는 등의 행동변화를 보입니다. 또한 예쁜꼬마선충의 운동 신경세포의 퇴행은 액체 배지 안에서 수영 능력의 감소와 고체 배지 위에서 이동하는 속도의 저하, 불규칙한 이동방향 등의 행동 표현형으로도 나타납니다 4-6
     

     

     

    • 예쁜꼬마선충에서 신경이 퇴행 되었다는 증거에는 어떤 것들이 있나요?
    • 선충의 신경세포도 노화가 되나요?
    • 1. Huang X, Wang C, Zhang T, et al. PIWI-interacting RNA expression regulates pathogenesis in a Caenorhabditis elegans model of Lewy body disease. Nat Commun. 2023;14(1):6137.
      2. Vérièpe J, Fossouo L, Parker JA. Neurodegeneration in C. elegans models of ALS requires TIR-1/Sarm1 immune pathway activation in neurons. Nat Commun. 2015;6:7319.
      3. Harvald EB, Sprenger RR, Dall KB, et al. Multi-omics Analyses of Starvation Responses Reveal a Central Role for Lipoprotein Metabolism in Acute Starvation Survival in C. elegans. Cell Syst. 2017;5(1):38-52.e4.
      4. Koopman M, Güngördü L, Seinstra RI, Nollen EAA. Neuronal overexpression of human TDP-43 in Caenorhabditis elegans causes a range of sensorimotor phenotypes. MicroPubl Biol. 2023;2023:10.17912/micropub.biology.000766.
      5. Sohrabi S, Mor DE, Kaletsky R, Keyes W, Murphy CT. High-throughput behavioral screen in C. elegans reveals Parkinson's disease drug candidates. Commun Biol. 2021;4(1):203.
      6. Currey HN, Liachko NF. Evaluation of Motor Impairment in C. elegans Models of Amyotrophic Lateral Sclerosis. J Vis Exp. 2021;(175):10.3791/62699.
    Print
  • 예쁜꼬마선충을 이용한 신경퇴행성 질환모델은 다른 모델 시스템에 비해 많은 장점이 있습니다. 척추동물의 신경계와 뇌는 매우 복잡하고 다른 조직으로 둘러싸여 있기 때문에 신경퇴행성 질환을 이해하는 연구는 해부학적으로 많은 제약이 있습니다. 예쁜꼬마선충은 302개의 신경세포로 이루어진 단순한 신경계를 가지고 있으며 이에 대한 연구가 잘 이루어져 있기 때문에 신경퇴행성 질환 환자에서 관찰되는 유전자 및 단백질의 도입 이후 신경계의 변화를 쉽게 분석할 수 있습니다1.
     

    * 그림출처:  Cook SJ et al. Nature. 2019;571(7763):63-71.

     

     

    둘째, 예쁜꼬마선충은 유전학 연구에 많은 장점을 갖는 모델생물입니다. 예쁜꼬마선충에 신경퇴행성 질환 관련 유전자 또는 단백질의 형질전환 그리고 CRISPR/Cas9, RNAi 등의 적용을 통한 신경퇴행성 질환의 분자적 경로를 탐구하기에 적합합니다2-5. 다른 모델생물과 비교하여 예쁜꼬마선충은 생애주기가 매우 빨라 신경퇴행성 질환 연관 유전자 스크리닝에 용이하고 자웅동체이기 때문에 돌연변이의 동형접합성이 자가수정을 통하여 쉽게 유지될 수 있습니다6.

     

        

    * 그림출처: (왼) Hayden AN et al. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 2022;267:111166., (오) Li J, Le W. Exp Neurol. 2013;250:94-103.

     

    셋째, 예쁜꼬마선충은 몸이 투명하기 때문에 신경세포를 형광 단백질로 표지하여 시각화가 가능합니다. 이러한 이점을 활용하여 점진적인 신경세포의 퇴행을 연구자가 쉽게 관찰할 수 있습니다. 또한, 예쁜꼬마선충은 광유전학적 기술을 활용할 수 있는 모델로 활용이 가능합니다. 예쁜꼬마선충은 광센서 유전자와 광반응성 이온 채널을 활용한 신경세포의 활성을 조절할 수 있으며 세포 내 광반응성 단백질을 통하여 원하는 단백질을 물리적으로 제어할 수 있습니다7, 8. 유기체인 예쁜꼬마선충에서 광유전학적 기술의 적용은 유전자, 단백질 그리고 세포의 변화를 유도할 수 있을 뿐만 아니라 이에 의해 나타나는 생물학적 표현형 분석도 가능한 유용한 모델로 활용될 수 있습니다.

     

     


    * 그림출처: Koopman M et al. BMC Biol. 2021;19(1):170.

    • 신경퇴행성 질환을 연구하기 위해 다른 모델생물과 비교하여 예쁜꼬마선충의 이점을 보여주는 실험에는 어떤 것이 있나요?
    • 선충을 이용한 신경퇴행성 질환의 연구는 어떻게 이뤄지나요?
    • 1. Cook SJ, Jarrell TA, Brittin CA, et al. Whole-animal connectomes of both Caenorhabditis elegans sexes. Nature. 2019;571(7763):63-71.
      2. Van Pelt KM, Truttmann MC. Caenorhabditis elegans as a model system for studying aging-associated neurodegenerative diseases. Transl Med Aging. 2020;4:60-72.
      3. Li J, Le W. Modeling neurodegenerative diseases in Caenorhabditis elegans. Exp Neurol. 2013;250:94-103.
      4. Dickinson DJ, Goldstein B. CRISPR-Based Methods for Caenorhabditis elegans Genome Engineering. Genetics. 2016;202(3):885-901.
      5. Sohrabi S, Mor DE, Kaletsky R, Keyes W, Murphy CT. High-throughput behavioral screen in C. elegans reveals Parkinson's disease drug candidates. Commun Biol. 2021;4(1):203.
      6. Hayden AN, Leptich EJ, Arey RN. Invited review: Unearthing the mechanisms of age-related neurodegenerative disease using Caenorhabditis elegans. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol. 2022;267:111166.
      7. Koopman M, Janssen L, Nollen EAA. An economical and highly adaptable optogenetics system for individual and population-level manipulation of Caenorhabditis elegans [published correction appears in BMC Biol. 2021 Sep 27;19(1):216]. BMC Biol. 2021;19(1):170.
      8. Otte CG, Fortuna TR, Mann JR, et al. Optogenetic TDP-43 nucleation induces persistent insoluble species and progressive motor dysfunction in vivo. Neurobiol Dis. 2020;146:105078.
       
    Print
  • 예쁜꼬마선충은 단순한 해부학적 구조를 가졌지만 신경계(Nervous System), 근육(Muscle), 장(Intestine), 피하조직(Hypodermis), 인두(Pharynx), 생식선(Gonad) 등 다양한 조직들을 갖고 있어 다양한 발생학적 연구에 사용될 수 있습니다. 일부 유전자는 특정 단일 세포에서만 발현되는 경우도 있지만 많은 경우 여러 조직에 동시에 발현하게 됩니다. 연구의 대상이 되는 유전자의 기전을 특정 조직에 한정해서 밝히기 위해서는 특정한 tissue에서만 발현하는 프로모터를 사용하는 것이 매우 유용합니다. 또한 예쁜꼬마선충에는 존재하지 않는 사람의 유전자를 도입해 형질전환동물을 만들 때도 이러한 프로모터를 사용하는 것이 중요합니다. 예를 들면, 알츠하이머병의 원인이 되는 amyloid-beta를 선충의 신경계에서 발현시켜 학습능력을 조사할 수 있고 근육에 발현시켜 운동능력을 조사하는 방식 등으로 활용되고 있습니다. 특히 다양한 신경과학적 연구를 위해서는 전체 302개의 뉴런 중에서 단일 신경에서만 원하는 유전자를 발현시키는 것이 광유전학(Optogenetics), 칼슘시각화(Calcium Imaging) 등의 기술을 접목시키는 데 필요한 과정입니다. 
     

     

    특정한 세포에 발현하는 프로모터들의 정보를 찾기 위해서 몇 가지 정보들을 고려하는 것이 좋습니다. 

     

    1. 우선적으로 이미 다른 연구에서 밝혀져 있는 특이적 프로모터들에 대해 검색해서 찾아볼 수 있습니다. 기존에 다른 연구기관에서 만들어진 특이적 프로모터들에 형광단백질 등을 발현시킨 형질전환 동물들을 얻어서 사용하는 것도 가능합니다. (예시: Caenorhabditis Genetics Center, WormBase, TransgeneOme website, C. elegans Expression Pattern website, National BioResource Project, CeNGEN)


    2. 공간적(spatial) 발현패턴 외에도 시간적(temporal) 발현패턴을 고려해야 할 수 있습니다. 예를 들면, 어떤 프로모터의 경우 유충(larva)시기에만 발현하고 성체(adult) 시기엔 발현이 약해지는 경우가 있을 수 있습니다. 


    3. 하나의 유전자에 대한 프로모터라고 하여도 어느 부위까지 클로닝이 되는지에 따라 전혀 다른 발현패턴을 나타낼 수 있습니다. 특히 신경세포의 경우, 프로모터의 일부만 사용하여 단일 신경세포 특이적인 발현을 유도할 수 있는 경우가 많습니다. Cre-loxP가 포함된 vector는 Addgene에서 쉽게 구할 수 있습니다.


    4. 일부 신경세포의 경우에는 아직까지 단일 세포 특이적인 프로모터가 밝혀지지 않은 경우가 있습니다. 이러한 경우 Cre-loxP를 이용해 두 가지 프로모터의 교집합으로서 특이적 발현을 유도하는 것이 유용하게 사용됩니다. (WormWeb에서 가능한 프로모터 조합을 찾을 수 있음)
     

     

    • 예쁜꼬마선충 내의 특정 조직이나 특정 세포에서 특정 유전자를 효과적으로 활성화 시킬 수 있는 방법이 있을까요?
    Print
  • 실험실에서 mutagenesis로 만든 mutant의 원인 유전자를 찾는 경우와, 자연적으로 존재하는 wild strain간의 표현형 차이를 조사하는 경우로 나누어서 볼 수 있습니다.

     


    [Mutant의 원인 유전자를 찾는 경우]


    1. Linkage Mapping (Genetic Mapping)

    유전학에서 사용되는 전통적인 방법으로, 찾고자 하는 돌연변이를 특정 표현형을 갖고 있고, 그 genetic position을 알고 있는 다른 strain과 교배 후 F2 돌연변이들이 표현형을 어느 정도 비율로 가졌는지를 통해 돌연변이의 상대적 위치를 파악하는 방법입니다. N2와 Hawaiian(CB4856)strain의 genome이 잘 알려져 있고 특정 위치에 strain 특이적으로 제한효소로 자르는 SNP marker(RFLP: Restriction Fragment Length Polymorphism)들이 잘 알려져 있기 때문에 이를 통한 genetic mapping이 손쉽게 사용 가능합니다. 전통적 mapping에서 유전자의 최종적인 정체를 파악할 때 때론 좁은 구간에 수많은 유전자들이 존재해 어려움이 있을 수 있습니다. 이 때 whole-genome sequencing을 동시에 사용하여 후보군을 좁히는 방법이 매우 유용할 수 있습니다. 


    2. Mapping-by-Sequencing

    NGS 기술의 발달로 이를 잘 활용하여 효율적인 유전자 발굴이 가능합니다. 대표적으로 background 품종(N2)과 genome 전반에 걸쳐 polymorphism이 있는 다른 품종(예를 들어, CB4856 strain)을 활용하는 방법이 있습니다. Mutant와 CB4856을 교배하여 그 자손 중 F2 돌연변이들을 고르고 이를 pool로 WGS 합니다. N2-CB4856의 allele frequency를 확인하고 CB4856의 allele frequency가 낮은 부위를 찾습니다. 즉, 돌연변이들을 골라서 sequencing 했기에 CB4856 genome으로 치환되지 않은 곳을 확인함으로써 원하는 유전자를 확인할 수 있습니다. 최근 들어 NGS 기술의 발달로 mutant를 backcrossing 한 후에 이들 sibling들을 바로 sequencing 하는 방법도 많이 사용됩니다. 

     

     

    [Wild Strain간의 Natural Variation의 경우]

     

    1. Linkage Mapping


    표현형에 차이가 있는 2개의 wild strain들을 교배시켜 유전체가 랜덤하게 섞여 있는 많은 자손들(Recombinant Inbred Lines, RILs)을 만든 후,  그 자손들의 표현형을 통해 표현형과 연관된 부위인 Quantitative Trait Locus(QTL)을 통계적으로 확인합니다. 2개가 아닌 더 많은 부모 strain을 교배로 섞어 확보해둔 Multiparent Panel(MPP)을 활용할 수도 있습니다 (lukemn.github.io/cemee/). 


    2. Genome-Wide Association (GWA) mapping


    많은 자연 품종들의 표현형과 유전정보 데이터를 활용하여 통계적으로 표현형과 연관된 Single Nucleotide Variants(SNV)들을 찾는 방법입니다. 다양한 야생 품종(Wild Strains)과 그 염기서열 정보가 필요합니다. Caenorhabditis Natural Diversity Resources(CaeNDR)에서는 wild strain들과 그 유전정보, GWA mapping 플랫폼을 제공하기도 합니다. (caendr.org)


    위의 방법들로 QTL을 찾았다면 QTL 주변의 일정 범위만 다른 품종의 genome으로 치환된 Near-Isogenic Lines(NILs)를 이용하여 QTL의 범위를 좁혀 나갈 수도 있습니다. 마지막으로 CRISPR을 이용하여 품종간 상호 allele을 치환시켜 보거나, hemizygosity test, complementation test 등을 통해 후보 유전자의 영향을 확인해 볼 수 있습니다. 
     

    • 실험실에서 흥미로운 돌연변이 표현형질을 나타내는 개체를 발굴했는데 이 형질의 원인이 되는 유전자는 어떻게 찾나요?
    • 1. Doitsidou M, Poole RJ, Sarin S, Bigelow H, Hobert O. C. elegans mutant identification with a one-step whole-genome-sequencing and SNP mapping strategy. PLoS One. 2010;5(11):e15435.
      2. Doitsidou M, Jarriault S, Poole RJ. Next-Generation Sequencing-Based Approaches for Mutation Mapping and Identification in Caenorhabditis elegans. Genetics. 2016;204(2):451-474.
      3. Andersen EC, Rockman MV. Natural genetic variation as a tool for discovery in Caenorhabditis nematodes. Genetics. 2022;220(1):iyab156.
      4. Bendesky A, Bargmann CI. Genetic contributions to behavioural diversity at the gene-environment interface. Nat Rev Genet. 2011;12(12):809-820.
      5. Gaertner BE, Phillips PC. Caenorhabditis elegans as a platform for molecular quantitative genetics and the systems biology of natural variation. Genet Res (Camb). 2010;92(5-6):331-348.
      6. Noble LM, Chelo I, Guzella T, et al. Polygenicity and Epistasis Underlie Fitness-Proximal Traits in the Caenorhabditis elegans Multiparental Experimental Evolution (CeMEE) Panel. Genetics. 2017;207(4):1663-1685.
      7. Snoek BL, Volkers RJM, Nijveen H, et al. A multi-parent recombinant inbred line population of C. elegans allows identification of novel QTLs for complex life history traits. BMC Biol. 2019;17(1):24.
      8. Cook DE, Zdraljevic S, Roberts JP, Andersen EC. CeNDR, the Caenorhabditis elegans natural diversity resource. Nucleic Acids Res. 2017;45(D1):D650-D657.
    Print
  • 예쁜꼬마선충 성체의 장내에는 미생물들이 살아있는 상태로 군집을 형성하게 됩니다. 예쁜꼬마선충은 먹고 자라는 미생물이 장내에서 군집을 형성하기 때문에 야생의 예쁜꼬마선충은 발견된 장소에 따라 다양한 종류의 장내 미생물을 보유하게 됩니다. 또한 먹이로 제공되는 미생물의 종류에 따라 예쁜꼬마선충의 성장속도, 수명, 생식 능력 등이 바뀌고 유전자들의 발현도 변하는 것이 알려져 있습니다. 이러한 특징 때문에 예쁜꼬마선충은 장내 미생물을 연구하기 아주 좋은 모델 동물입니다.


    최근에는 대장균 BW25113 종의 단일 유전자 결손 라이브러리를 장내 미생물의 모델로 이용하여 예쁜꼬마선충의 수명 변화를 측정하고 관련 기전을 밝혀낸 연구가 진행되었고 그 결과, 심지어 장내 미생물의 유전자가 하나만 변하여도 예쁜꼬마선충의 전사체 발현이 변하는 것이 밝혀졌습니다. 이러한 사실들을 종합해 볼 때 예쁜꼬마선충은 먹이로 먹은 장내 미생물의 유전적 특징에 의해 유전자 발현이 바뀔 수도 있다는 것을 알 수 있습니다.
     

     

    • 예쁜꼬마선충은 박테리아가 주 먹이원으로 알고 있는데 숙주-미생물 상호작용 연구 즉, 마이크로바이옴 연구에도 사용 가능한가요?
    • 1. Clark LC, Hodgkin J. Commensals, probiotics and pathogens in the Caenorhabditis elegans model. Cell Microbiol. 2014;16(1):27-38.
      2. Samuel BS, Rowedder H, Braendle C, Félix MA, Ruvkun G. Caenorhabditis elegans responses to bacteria from its natural habitats. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113(27):E3941-E3949.
      3. Schulenburg H, Félix MA. The Natural Biotic Environment of Caenorhabditis elegans. Genetics. 2017;206(1):55-86.
      4. Shin MG, Lee JW, Han JS, et al. Bacteria-derived metabolite, methylglyoxal, modulates the longevity of C. elegans through TORC2/SGK-1/DAF-16 signaling. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020;117(29):17142-17150.
    Print
  • 전사체 정보의 분석은 크게 두가지 단계로 나뉘어집니다. 


    1) 단일세포를 분리하고 RNA sequencing을 통해 전사체 정보를 추출하는 실험적 단계
    2) 컴퓨터를 이용하여 sequencing을 통해 얻어진 전사체 정보를 분석하는 분석적 단계


    실험적 단계에서 예쁜꼬마선충의 단일세포 수준 전사체를 얻기 위해서는 큐티클 층을 제거하는 작업을 먼저 거쳐야 합니다. 큐티클 층 제거 이후 단일 세포들을 10x chromium system 등의 방법을 통해 RNA sequencing을 진행하고 전사체 정보를 얻을 수 있습니다. Sequencing 결과로 얻어진 데이터 파일들은 대표적으로 ‘R’ 프로그램의 ‘Seurat’, ‘monocle3’ 등의 package를 이용하여 분석을 진행할 수 있습니다.


    실험적 단계없이 이미 출판된 논문의 data를 이용하여 분석만을 진행할 수도 있습니다. 일반적으로 논문 method의 data availability 항목에서 NCBI GEO 번호를 확인할 수 있으며, 해당번호를 통해 필요한 single cell RNA sequencing data를 다운로드하여 분석할 수 있습니다. 예쁜꼬마선충은 single cell RNA sequencing를 통해 L2 단계에서 처음으로 세포타입별 전사체 변화가 밝혀졌고, L4 단계의 예쁜꼬마선충에서는 모든 신경의 전사체 변화와 새로운 신경 타입별 마커가 발굴이 되기도 했습니다. 최근에는 성체 예쁜꼬마선충의 노화에 따른 각 세포타입별 전사체 변화까지 보고된 바 있습니다.

     


     

    • Single cell-seq을 통해 새롭게 알게 된 정보는 무엇인가요?
    • 1. Cao J, Packer JS, Ramani V, et al. Comprehensive single-cell transcriptional profiling of a multicellular organism. Science. 2017;357(6352):661-667.
      2. Taylor SR, Santpere G, Weinreb A, et al. Molecular topography of an entire nervous system. Cell. 2021;184(16):4329-4347.e23.
      3. Roux AE, Yuan H, Podshivalova K, et al. Individual cell types in C. elegans age differently and activate distinct cell-protective responses. Cell Rep. 2023;42(8):112902.
    Print
  • 인간화 마우스는 인간의 세포 또는 조직을 이식하여 인간의 특성이나 기능을 재현한 마우스 모델입니다.


    Human Immune System(HIS) 마우스는 인간의 CD34+ 조혈모세포(Hematopoietic Progenitor Cell, HPC)를 면역결핍 마우스에 이식하여 인간의 면역계를 모방한 마우스 모델입니다. 이식된 조혈모세포는 마우스의 골수에서 T 세포, B 세포, NK 세포 등 다양한 인간 면역세포로 분화하여 인간의 면역계를 모방합니다. HIS 마우스는 면역성 질병, 백신 개발과 같은 면역학적 연구에서 활용되는 인간화 마우스 모델입니다.


    BLT(Bone Marrow, Liver, Thymus) 마우스는 인간의 골수, 간 및 가슴샘을 면역결핍 마우스에 이식하여 복잡한 인간 면역 시스템을 정교히 모방한 모델입니다. 이는 HIV 연구에 많이 활용되는 인간화 마우스 모델입니다.
     

    • Humanized Mouse는 무엇인가요?
    • 1. Melkus MW, Estes JD, Padgett-Thomas A, et al. Humanized mice mount specific adaptive and innate immune responses to EBV and TSST-1. Nat Med. 2006;12(11):1316-1322.
      2. Legrand N, Ploss A, Balling R, et al. Humanized mice for modeling human infectious disease: challenges, progress, and outlook. Cell Host Microbe. 2009;6(1):5-9.
      3. Karpel ME, Boutwell CL, Allen TM. BLT humanized mice as a small animal model of HIV infection. Curr Opin Virol. 2015;13:75-80.
    Print
  • 면역체계가 일부 결핍되어 있는 면역결핍 마우스는 대표적으로 Nude 마우스 및 SCID 마우스가 있습니다. 


    Nude 마우스는 Foxn1 유전자 조작을 통해 T세포의 성숙이 일어나는 가슴샘이 없어진(Athymic) 면역결핍 마우스 모델입니다. 이 마우스 모델은 성숙한 T세포가 없어 이식편대숙주반응(GVHD) 및 종특이성 반응이 없습니다. 따라서 xenograft와 같은 종양이식 모델로 자주 사용됩니다.


    SCID 마우스는 DNA 수리에 중요한 Prkdc 유전자 조작으로 T 세포 및 B 세포가 형성되지 못하는 면역결핍 마우스입니다. 이 모델은 면역결핍 질환 및 이식모델로 자주 사용되며 T 세포 및 B 세포의 결함으로 인해 항체를 만들지 못하기 때문에 항체 기반의 면역 반응 연구에는 적합하지 않습니다. 


    NOD 마우스는 T 세포 면역억제에 관여하는 Ctla4 유전자 조작으로 만든 인슐린 의존성 당뇨 마우스 모델입니다. 제1형 당뇨병 연구와 함께 다양한 자가면역 질환이 유발되기 때문에 자가면역 연구에 활용됩니다.
     

    • Nude Mouse는 무엇인가요?
    • SCID 마우스는 무엇인가요?
    • 1. Pantelouris EM. Absence of thymus in a mouse mutant. Nature. 1968;217(5126):370-371.
      2. Flanagan SP. 'Nude', a new hairless gene with pleiotropic effects in the mouse. Genet Res. 1966;8(3):295-309.
      3. Bosma GC, Custer RP, Bosma MJ. A severe combined immunodeficiency mutation in the mouse. Nature. 1983;301(5900):527-530.
      4. Price JE. Xenograft models in immunodeficient animals : I. Nude mice: spontaneous and experimental metastasis models. Methods Mol Med. 2001;58:205-213.
      5. Schumacher U, Brooks SA. Xenograft Models in Immunodeficient Animals : II. The Use of SCID Mice in Metastasis Research: Breast and Colon Cancer Models of Metastasis. Methods Mol Med. 2001;58:215-222.
      6. Leiter EH. The NOD Mouse: A Model for Analyzing the Interplay Between Heredity and Environment in Development of Autoimmune Disease. ILAR Journal. 1993;35(1):4–14.
    Print
  • Fecal transplantation은 대변 이식이라고 불리며 건강한 기증자로부터 대변을 수집하여 환자의 위장관에 이식하는 절차입니다. 이 절차는 건강한 세균을 수용자의 장에 이식함으로써 Clostridium difficile(C. diff) 감염을 치료할 수 있습니다. 마우스에서의 fecal transplantation은 다음과 같은 과정으로 진행됩니다.

     

    항생제를 이용하여 기존의 장내 세균(Microbiota)을 제거한 recipient mouse의 gastrointestinal tract에 건강한 마우스의 fecal 샘플을 넣어줍니다. 이 과정은 위로 바로 전달할 수 있는 oral gavage와 같은 방법이나 enema(관장)와 같은 방법을 사용합니다.
     

     

    * 그림출처: Bokoliya SC et al. Front Cell Infect Microbiol. 2021;11:711055.

    • Fecal Transplantation이 무엇인가요?
    • 분변이식연구는 어떻게 할까요?
    Print
  • 무균 마우스는 다른 말로는 ‘axenic(무균의)’로 불리며 체내에 미생물을 갖고 있지 않은 마우스를 의미합니다. 계대유지를 위해 무균사육장비(isolator) 등 특수시설이 필요하며 주기적으로 무균 상태를 엄격하게 검사합니다.


    무균 마우스를 만드는 과정은 세균이 없는 mother를 사용하며 새끼가 태어나기 전에 희생되고 살균 처리됩니다. 제왕 절개로 태어난 후, 새끼는 이후에 세균이 없는 mother가 있는 살균된 보관소로 옮겨져서 먹이를 받고 성장해야 합니다.


    항생제를 투여받은 쥐는 완전히 세균이 제거되지는 않지만 세균 load의 감소는 세포 군집, 신호 전달 경로, 그리고 장기 형태의 변화와 관련이 있으며 종종 결과는 germ-free 쥐에서 관찰되는 것과 유사합니다.

    • 무균 마우스는 무엇인가요?
    • 항생제를 투여하는 마우스와 무균 마우스는 어떤 차이가 있나요?
    Print