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지식 FAQ

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  • DNA 용액 구성은, 도입할 유전자를 적절한 프로모터에 연결한 플라즈미드와 co-injection marker 플라즈미드로 이루어집니다.

     

    각각의 DNA를 물에 희석하여 총 10ng/ul의 농도로 준비하는데, 이 때 각각의 플라즈미드 농도는 유전자와 프로모터에 따라 적정량이 다를 수 있으니 같은 플라즈미드나 프로모터를 사용한 다른 논문을 참조하시면 좋습니다.

     

    때로는 filler DNA를 넣어주어 10ng/ul의 농도의 총량을 맞출 수도 있습니다. 이 때 쓰는 filler DNA는 선충세포에서 읽히지 않은 DNA로서 DNA ladder, 또는 empty vector 등이 쓰입니다. DNA 용액은 순도가 높을 수록 injection 효율이 좋아지므로 높은 purity를 보장하는 miniprep 또는 midi, maxiprep kit를 사용하는 것이 좋습니다.

    • 선충 주입에 사용할 DNA 용액은 어떻게 준비하나요?
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  • 형질전환종은 주입한 DNA를 일부러 염색체에 삽입하는 과정을 거치지 않은 한 extrachromosomal array로서 존재하게 되고 이는 다음 세대에 100% 전달되지 않기 때문에 배양시 매 세대마다 형질전환 DNA를 가지고 있는 선충을 골라주는 과정을 거쳐야 합니다.

     

    이 때 형질전환종 식별 방법은 co-injection marker의 형질을 찾는 것인데, co-injection marker는 시각적으로 형질전환종을 식별이 가능하게끔 특정 부분에 형광단백질이 발현하게 하거나 움직임의 변화를 가져오는 유전자를 지닌 플라즈미드를 사용합니다.

     

    사용하는 형질전환종의 genotype 정보를 참고하여 해당 형질을 골라 배양하면 됩니다.

    • Co-injection marker는 어떤 역할을 하며, 어떻게 형질전환체를 선별하나요?
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  • 외부 DNA가 플라즈미드 형태로 주입되면 해당 DNA는 여러 개의 복제본이 서로 연결되어 뭉친 형태로 세포핵에 존재합니다.

    이를 extrachromosomal array라고 합니다.

     

    이로 인해 나타나는 현상으로서 주의해야 할 것은:

     

    1. Extrachromosomal array는 정식 염색체가 아니므로 감수분열 시 정확히 분리되지 않기 때문에 다음 세대에 100% 전달되지 않습니다. 따라서 co-injection marker를 이용하여 매 세대마다 형질전환종을 선별하여 배양해야 합니다.
     
    2. 각 형질전환종 라인마다 extrachromosomal array를 구성하는 플라즈미드 DNA의 양(copy number)에 차이가 있습니다. 그렇기 때문에 각각의 라인을 구분하여 실험에 사용하여야 합니다.
    • Extrachromosomal array란 무엇이며, 왜 형질전환체의 유전이 불안정한가요?
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  • 돌연변이는 기존 유전자를 손상시키거나 변형시키는 반면, 형질전환은 외래 DNA를 추가로 주입해서 새로운 기능이나 발현을 유도합니다.

     

    즉, 돌연변이는 파괴(disruption), 형질전환은 추가(addition) 방식입니다.

    • 형질전환과 돌연변이 유발 실험은 연구 목적에서 어떻게 다르나요?
    • 1) Jeremy Nance, Christian Frøkjær-Jensen, The Caenorhabditis elegans Transgenic Toolbox, Genetics, Volume 212, Issue 4, 1 August 2019, Pages 959–990, https://doi.org/10.1534/genetics.119.301506
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    • 2) Fay D.S. Classical genetic methods (December 30, 2013), WormBook, ed. The C. elegans Research Community, WormBook, doi/10.1895/wormbook.1.165.1, http://www​.wormbook.org
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  • 예쁜꼬마선충이 원래 발현하지 않은 외부 유전자를 발현하고 싶을 때, 또는 특정 유전자 변이종에서 해당 유전자를 특정 부분에만 다시 발현시키고 싶을 때 형질전환종을 제작하게 됩니다.

     

    또 다른 경우는, 조직이나 세포별 유전자 발현양을 알고 싶을 경우, 예쁜꼬마선충은 특정 조직이나 기관을 해부하여 분리하는 것이 어렵기 때문에, western blot 이나 qPCR 대신 해당 유전자 프로모터에 형광단백질을 발현시켜 형광단백질의 양을 in vivo에서 측정함으로서 발현양을 가늠합니다.

     

    • 형질전환을 통해 어떤 실험적 정보를 얻을 수 있나요?
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  • - READI는 “CRISPR RNP electroporation + AAV donor 감염”을 결합해 배아에 미세주입 없이도 대형 삽입을 효율적으로 구현하는 Knock-in 제작법입니다.
     
    - 타겟·Knock-in donor 설계: sgRNA와 Cas9 표적을 정하고, AAV donor에 삽입 카세트(예: 리포터, CreERT2, Rosa26 발현카세트)를 양쪽 상동팔과 함께 담습니다. self-complementary AAV(scAAV)는 ~2.4 kb, single-stranded AAV(ssAAV)는 ~4.9 kb까지 donor 적재가 가능합니다.
     
    - 배아 준비·AAV 감염: 과배란으로 채란한 접합자를 AAV1(또는 AAV6)로 전처리합니다(AAV1 사용 시 생산성·감염 효율 양호). 용량은 ~10^8–10^9 GC 범위에서 HDR↔생존률 균형을 맞추고, electroporation 6시간 전 미리 감염하면 HDR이 극대화됩니다.
     
    - RNP electroporation: Cas9/sgRNA RNP를 접합자에 electroporation으로 도입하고, AAV donor는 배아 내에서 HDR 템플릿으로 작동합니다. 이후 2-cell까지 배양 후 대리모 암컷에 이식합니다.
     
    - 장점·주의: 주입기술 없이 고효율·고처리량으로 다형질(리포터·재조합효소·대형 발현카세트) KI가 가능하나, AAV 용량이 높을수록 배아 생존률이 떨어질 수 있습니다.
    • 마우스 유전자를 인간의 유전자와 바꿀 수 있나요?
    • CRISPR/Cas 기반 유전자 치료 접근을 위한 최적화된 마우스 모델이 있나요?
    • CRISPR-READI: Efficient Generation of Knockin Mice by CRISPR RNP Electroporation and AAV Donor Infection. Cell Rep. 2019 Jun 25;27(13):3780-3789.e4.
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    - CRISPR-VIM(CRISPR-VLP-induced targeted mutagenesis) 을 IVF 파이프라인에 통합해, 수정 후 배양 단계에서 배아를 VLP와 단순 공배양하는 방식으로 마우스 모델을 제작합니다. 핵심 마우스모델 제작 방법은 아래와 같습니다.
     
    - 과배란·난자/정자 준비 및 IVF: 표준 HyperOva–hCG 스케줄 후 채란, 정자 준비로 수정 실시
     
    - 편집 도구 준비: 목표 유전자에 맞춘 sgRNA와 SpCas9/ABE/CBE 등 RNP를 VLP에 포장하여 준비합니다. KI가 목적이면 AAV(ss/scAAV6 등) donor를 병용 가능합니다.
     
    - 체외 수정후 공배양: 수정이 끝난 1-세포기 배아를 VLP-CRISPR RNP가 전체 배양액의 10%(+)/20%(++)가 되도록 넣어 37 °C, 5% CO₂에서 최대 20시간 배양합니다. 20% 조건에서 대체로 높은 편집 효율을 보이며, 이 단계에서의 처리만 배아 발달률 저하가 없었습니다(정자 전 처리/수정 중 투여는 발달률 감소).
     
    - 2-세포 이식 및 출산: 2-세포기에 도달한 배아를 대리모 난관에 이식해 새끼를 얻습니다.
     
    - 유전자형 확인·전달성 검증: F0 배아/개체에서 NGS/Sanger로 편집 확인, F1 교배로 생식계열 전달을 검증합니다.
     
     
    • 마우스 유전자를 인간의 유전자와 바꿀 수 있나요?
    • CRISPR/Cas 기반 유전자 치료 접근을 위한 최적화된 마우스 모델이 있나요?
    • An innovative approach using CRISPR-ribonucleoprotein packaged in virus-like particles to generate genetically engineered mouse models. Nat Commun. 2025 Apr 11;16(1):3451.
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  • - CRISPR-VIM은 CRISPR 리보핵단백질(RNP)을 VLP에 담아 1-세포기 배아와 단순 공배양만으로 변이를 유도한 뒤, 2-세포 단계에서 대리모에 이식해 마우스 모델을 얻는 방법입니다. 핵심 마우스모델 제작 방법은 다음과 같습니다.
     
    - 과배란·채란: 수컷과 교배 후 1-세포기 접합자를 회수합니다(표준 HyperOva/hCG 스케줄).
     
    - 편집도구 준비: 목표 유전자에 맞춘 sgRNA와 SpCas9(또는 ABE/CBE) RNP를 VLP에 포장합니다. 필요 시 KI를 위해 AAV(ss/scAAV6 등)에 도너 DNA를 준비합니다.
     
    - 공배양 처리: 접합자를 배양액의 10–20% v/v 농도의 VLP와 37 °C·5% CO₂에서 최대 20시간 공배양합니다(20% 처리군에서 편집 효율 향상, 배아 독성 차이 미미). KI가 목적이면 AAV donor를 동시에 또는 6시간 선처리로 투여합니다.
     
    배양·이식: 2-세포까지 배양 후 대리모 암컷 마우스 난관에 이식해 새끼를 얻습니다.
     
    검증: F0 배아/개체에서 NGS 또는 Sanger로 유전자형을 확인하고, 필요 시 효소절단(예: EcoRI KI 검증)과 오프타겟 분석을 수행합니다. 모자이크를 고려해 F1 교배로 생식계열 전달을 확인합니다.
     
     
    • 마우스 유전자를 인간의 유전자와 바꿀 수 있나요?
    • CRISPR/Cas 기반 유전자 치료 접근을 위한 최적화된 마우스 모델이 있나요?

      1. An innovative approach using CRISPR-ribonucleoprotein packaged in virus-like particles to generate genetically engineered mouse models. Nat Commun. 2025 Apr 11;16(1):3451.

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  • - 형광 리포터 마우스는 특정 세포나 조직에서 유전자가 켜질 때 형광 단백질이 빛나도록 만든 마우스입니다. 만드는 과정은 대략 다음과 같습니다:
     
    타겟 유전자 선택: 연구하고 싶은 유전자나 세포 유형을 결정합니다.
     
    형광 유전자 설계: GFP(녹색), RFP(빨강) 등의 형광 단백질 유전자를 선택합니다.
     
    유전자 삽입: CRISPR/Cas9 같은 유전자 편집 도구를 이용하여 선택한 유전자 위치에 형광 유전자를 삽입합니다. 또는 전통적인 knock-in 방법으로 수정합니다.
     
    마우스 제작: 수정된 배아를 어미 마우스에 이식하여 새끼를 얻습니다.
     
    관찰: 형광이 켜지는 세포나 조직을 현미경으로 직접 확인할 수 있습니다.
     
     
    • 특정 유전자나 세포를 추척하는 마우스 모델은 어떻게 만드나요?
    • Platt, R.J. et al. (2014). CRISPR-Cas9 knockin mice for genome editing and lineage tracing. Cell, 159(2), 440–455
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  • 사람의 폐질환을 직접 연구하기는 어렵기 때문에, 과학자들은 마우스를 이용하여 비슷한 병을 흉내낸 모델을 만듭니다. 이를 통해 질병의 원인을 밝히고, 새로운 치료법을 실험할 수 있습니다.

     

    질환 (Disease)

    마우스 모델 방법

    질환의 특징

    사람 질환과의 연결

    폐섬유화 (Pulmonary fibrosis)

    Bleomycin 약물을 폐에 넣음

    폐 조직이 굳어지고 섬유화(흉터) 발생

    특발성 폐섬유증 (IPF)

    COPD (만성폐쇄성폐질환)

    담배 연기 오래 노출 / elastase 투여

    폐포가 파괴 → 숨쉬기 어려움

    흡연 관련 COPD, 폐기종

    천식 (Asthma)

    OVA(달걀 단백질), 집먼지진드기(HDM) 알레르겐 주입

    기도가 좁아짐, 기침/가래/천명

    알레르기성 천식

    급성폐손상 / ARDS

    세균 성분 LPS 주입 / 기계적 환기

    폐에 염증, 물이 차서 호흡 곤란

    감염·패혈증·코로나19 관련 ARDS

    폐암 (Lung cancer)

    Kras^G12D^ 유전자 변형 / 발암물질(NNK)

    폐에 종양이 생겨 점점 커짐

    비소세포성 폐암(NSCLC)

    폐고혈압 (Pulmonary hypertension)

    저산소 환경(hypoxia) / monocrotaline

    폐 혈관이 두꺼워지고 심장이 부담

    폐동맥고혈압(PAH)

    • 폐에 일어나는 다양한 질병에 대한 마우스 모델은 어떻게 만드나요?
    • Moiseenko A, et al. Lung disease mouse models: insights and limitations. Respir Res. 2020;21:29
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